Разнообразие психрофильных бактерий и их биотехнологический потенциал (обзор) | Вестник Томского государственного университета. Биология. 2022. № 58. DOI: 10.17223/19988591/58/2

Разнообразие психрофильных бактерий и их биотехнологический потенциал (обзор)

Психрофильные микроорганизмы широко распространены по всему миру. Из выделенных и охарактеризованных таксономических групп психрофильных микроорганизмов подавляющее большинство составляют бактерии. На основе литературных данных рассмотрено разнообразие психрофильных бактерий. Показано, что они встречаются в морях, океанах, глубоководных соленых озерах, во льдах Арктики, почвах тундры и вершинах горных массивов, пещерах. Психрофильные бактерии обладают ценным природным ресурсом с потенциалом в различных биологических областях, проявляя разнообразную биохимическую активность. В природе встречаются бактерии, имеющие отличительные особенности строения клетки, например, присутствие в клеточной стенке восков и липидов является одним из способов адаптации к холодным условиям. Для защиты от замерзания некоторые бактерии выделяют антифризные белки. Особое внимание уделили биоразнообразию психрофильных бактерий, способных производить промышленно значимые ферменты. Выявлены наиболее значимые и интересные представители данной группы микроорганизмов. Холодоактивные ферменты, выделяемые психрофильными бактериями, имеют большой потенциал применения их в биотехнологии, медицине, сельском хозяйстве, генной инженерии. Известны психрофилы, которые являются деструкторами нефтепродуктов и гербицидов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Diversity of Psychrophilic Colonies and Their Biotechnological Potential.pdf Введение Среди микроорганизмов, способных к росту при низких температурах, выделяют две физиологические группы - облигатные и факультативные психрофилы (иногда называемые психротрофами) [1, 2]. Они различаются по своим экологическим нишам и механизмам адаптации к холоду. Обли-гатно психрофильные микроорганизмы растут при температурах ниже 20 °С (оптимум ниже 15 °С) вплоть до отрицательных значений температур. Факультативные психрофилы способны расти и развиваться при 0 °С с температурным оптимумом от 25 до 30 °C и температурным максимумом около 35 °С. Таким образом, факультативные психрофилы способны расти в условиях, благоприятных для мезофилов [3, 4], при этом осуществляют полный цикл развития при низких температурах [5]. При понижении температуры нормальные процессы жизнедеятельности клеток нарушаются: наблюдается снижение активности ферментов и текучести мембран [6], нарушается транспорт питательных веществ и продуктов метаболизма [7], снижается скорость транскрипции, трансляции и деления клеток, наблюдаются холодная денатурация и сворачивание белка 30 Сидоренко М.Л., Русакова Д.А Разнообразие психрофильных бактерий [8]. В низкотемпературных экосистемах, как правило, доминируют бактерии [9]. Психрофильные бактерии выработали ряд адаптаций, позволяющих им существовать в подобных условиях. Одной из таких адаптаций является использование ферментов, обладающих высокой удельной активностью при низких температурах. Такие ферменты обычно называются холодоактивными [3]. Возрастающий интерес мирового научного сообщества к психрофиль-ным микроорганизмам связан с их холодоактивными ферментами, которые являются перспективным ресурсом применения в биотехнологии и промышленности. Благодаря высокой каталитической активности при температурах ниже 25 °C, они являются превосходным биокатализатором, не требующим нагревания, что обеспечивает более высокое качество продукции, устойчивость и эффективность промышленных процессов [8]. Помимо активности при низких температурах, интересна также высокая термолабильность холодоактивных ферментов, которая обеспечивает возможность быстрой инактивации этих ферментов путем мягкой термической обработки, что представляет особый интерес в пищевой промышленности [10, 11]. В обзоре мы рассматриваем отдельные рода психрофильных бактерий, существующие мировые тенденции к изучению холодоактивных ферментов, их применение и место в промышленной биотехнологии. Особое внимание уделили биоразнообразию психрофильных бактерий, способных производить промышленно значимые ферменты. Таким образом, основная цель этого исследования состояла в том, чтобы изучить разнообразие психрофиль-ных бактерий, а также возможность их применения в биотехнологии. Многообразие сред обитания психрофилов Природные экологические ниши психрофилов многочисленны и многообразны. Психрофилы формируют постоянную микрофлору регионов вечного холода, полярных регионов и океанов. Океаны занимают большую часть холодных местообитаний (70%), за ними следуют заснеженные массивы суши (15%), а остальные составляют микроклиматические холодные зоны и антропогенные холодные области [1]. Бактерии данной группы обнаружены в почве, воде или связаны с растениями и животными [12]. В лесных криогенных почвах севера Средней Сибири выявлено преимущественное развитие комплексов психротолерантных бактерий и микро-мицетов [13]. Психрофильные бактерии обнаружены также в высокогорье -альпийских почвах [14]. Из заболоченной почвы тундры выделен первый психрофильный метанотроф Methylobacter psychrophilus (грамотрицатель-ные кокки и диплококки), оптимальная температура его роста составляла 510 °С [15]. В тундре обнаружено метанотрофное психрофильное сообщество бактерий, из которого выделен психротолерантный аэробный гетеротрофный представитель простекобактерий рода Caulobacter [16]. Важным местообитанием психрофильных микроорганизмов являются низкотемпературные водоёмы. Исследования В.В. Парфеновой с соавт. по-31 Биотехнология и микробиология / Biotechnology & Microbiology казали, что температурный оптимум роста большинства байкальских бактерий находится в области от 18 до 22°С [17]. Следует подчеркнуть, что пси-хрофилы широко распространены в природе, поскольку они формируют постоянную микрофлору регионов вечного холода. В настоящее время из донных отложений и морских вод Арктики и Антарктики выделено и описано много новых родов психрофилов и психротрофов семейства Flavobacteriaceae [18, 19] и Chryseobacterium [20]. Большинство бактерий, выделенных из морского льда, пигментированы, хорошо адаптированы к холоду, а некоторые способны образовывать газовые пузырьки [4]. Психрофильные микроорганизмы обнаружены в пещерах. Изучение микробиоты пещер Средней Сибири [21] показало присутствие в естественных микробных сообществах психрофильных и психротолерантных бактерий, способных к росту в интервале температур от 3 до 20 и от 3 до 28 °С соответственно. При этом общая численность бактерий в пещерах во многих случаях соответствует численности бактерий и в наземных экосистемах региона или даже превосходит её [22]. В тысячелетних льдах пещеры Скэри-шоара (горы Апусени, Румыния) обнаружены психрофильные бактерии, демонстрирующие широкий спектр устойчивости к противомикробным препаратам и значительную каталитическую активность, являясь, таким образом, ценными кандидатами для биомедицинских и биотехнологических применений [23]. Обнаружение микроорганизмов в древних кристаллических структурах льда свидетельствует о принципиальной возможности явления сверхдлительного анабиоза, о сохранении жизнеспособности древнего поколения без деления в течение продолжительного временного периода [9, 24]. Психротрофы более широко распространены, чем облигатные психро-филы. При температуре 0 °С облигатные психрофилы растут быстрее, что в конечном счете и обеспечивает их доминирование в местах обитания с постоянно низкими значениями температуры [25]. В условиях умеренного климата весной, когда температура поднимается до 25-30 °С, она становится мощным селективным фактором, благоприятным для психротолерантных микроорганизмов и исключающим облигатные формы [26]. В регионах с постоянно низкими температурами психрофильные бактерии играют существенную роль в превращении веществ. В таких условиях деятельность ме-зофильной микрофлоры полностью блокирована низкими температурами, однако благодаря психрофилам круговорот веществ не прерывается [4]. Биоразнообразие психрофильных бактерий Психрофилы не образуют единой или хотя бы нескольких филогенетических групп [1, 27]. Из выделенных и охарактеризованных таксономических групп психрофильных микроорганизмов подавляющее большинство составляют бактерии [4, 12]. Среди них есть палочки, кокки, вибрионы, грамотрица-тельные и грамположительные, образующие споры и не образующие их, строгие аэробы, факультативные и строгие анаэробы [28]. Психрофильные формы обнаружены среди представителей родов Vibrio, Aliivibrio, Pseudomonas, 32 Сидоренко М.Л., Русакова Д.А Разнообразие психрофильных бактерий Achromobacter, Aeromonas, Alcaligenes, Alteromonas, Arthobacter, Bacillus, Clostridium, Corynebacterium, Nitro-bacter, Nitrozomonas, Micrococcus, Myxococcus, Sorangium, Proteus, Psychro-bacter, Psychromonas, Streptococcus, Flavobacterium, Janthinobacterium и др. [5, 7, 28, 29]. В 1970-е гг. обнаружили фаги психрофильных бактерий, которые в большинстве случаев сами проявляют психрофильные свойства. Выделены фаги, специфичные для грамотрицательных бактерий, в частности, для видов Pseudomonas и некоторых морских бактерий, и для грамположитель-ных (например, Micrococcus cryophilus) [29]. Среди фототрофных микроорганизмов встречаются психрофилы, способные развиваться на поверхности снега или льда. Опубликованы сведения о составе микробного сообщества «красного снега» прибрежного района Восточной Антарктиды, характерная окраска которого обусловлена наличием пигмента астаксантина, накапливающегося в результате роста фототрофных бактерий на поверхности снега, принадлежащих к нескольким таксономических группам Bacteroidetes, Actinobacteria, Firmicutes и Proteobacteria [30]. Представители родов Vibrio и Aliivibrio Vibrio - род грамотрицательных бактерий, обладающих формой изогнутой палочки (запятой). Виды вибрионов, обычно встречающиеся в соленой воде, являются факультативными анаэробами, которые дают положительный результат на оксидазу и не образуют спор. Все представители рода подвижны. Они могут иметь полярный или латеральный жгутик с оболочками или без них [31]. H. Urbanczyk et al. продемонстрировали филогенетические и фенотипические отличия группы микроорганизмов от других родов семейства Vibrionaceae и предложили новый род Aliivibrio. Род Aliivibrio включает четыре вида: Aliivibrio fischeri и три психротолерант-ных вида - Aliivibrio salmonicida, Aliivibrio wodanis и Aliivibrio logei [32]. Из дренажного бассейна завода по переработке рыбопродуктов выделен штамм психротрофной бактерии Vibrio rumoiensis с оптимальной температурой активности каталазы около 30 °С. Этот штамм предложено применять для очистки сточных вод с низким энергопотреблением [33]. Aliivibrio salmonicida - грамотрицательная морская бактерия, являющаяся причиной холодноводного вибриоза у атлантического лосося (Salmo salar), трески (Gadus morhua) и иногда радужной форели (Oncorhynchus mykiss). С. Karlsen et al. выделили из суспензии клеток A. salmonicida Pal-подобный белок - липопротеин [34], который можно считать потенциально полезным компонентом при разработке вакцин и исследованиях патогенности в будущем. Недавние исследования доказали, что A. salmonicida может разлагать и метаболизировать хитин [35]. Хитиназная активность бактерий является перспективным источником в качестве потенциального биоинсектицида и биофунгицида [36]. С.А. Хрульнова с соавт. изучили Quorum sensing, регуляцию экспрессии lux-генов и структуру lux-оперона у бактерий Aliivibrio logei, которые являют-33 Биотехнология и микробиология / Biotechnology & Microbiology ся психрофилами (растут при 4 °С, и не растут при 30 °С). Эти вибрионы обнаруживаются исключительно в световых органах кальмаров рода Sepiola, обитающих в глубоких и холодных водах Атлантики [37]. Полученные знания в области исследования Quorum sensing позволяют применять их в борьбе с резистентностью антибиотиков по отношению к биопленкам, так как Quorum Sensing действует как механизм, который определяет регуляцию скоординированного поведения бактерий на уровне популяции. Представители рода Pseudomonas Pseudomonas - род грамотрицательных аэробных неспорообразующих бактерий. Представители рода Pseudomonas подвижны и имеют форму прямых или изогнутых палочек и два полярно расположенных жгутика [31]. Они широко используются в хозяйственной практике, для производства антибиотиков, извлечения остаточной нефти из скважин, для борьбы с загрязнением окружающей среды, а также в качестве моделей для многочисленных теоретических исследований [2, 33]. Из пресной воды Антарктики выделен психрофильный штамм Pseudomonas antarctica, который проявляет антимикробную активность за счет содержания кластера генов, кодирующих микроцин В, ингибирующий регуляцию ДНК. Кроме того, P. antarctica может продуцировать пиоцины R-типа, а также содержит полный набор белков для биосинтеза аденозилкобала-мина и, возможно, стимулирует рост растений путем подачи молекул пирролохинолина квионона [38]. В исследованиях S. Kumar et al. задокументирован протеом гималайского психрофильного диазотрофа Pseudomonas helmanticensis и показана его сеть взаимодействия белок-белок при холодовом стрессе [39]. Данные исследования позволяют подробно изучить механизм адаптации психрофильных бактерий к холодовому стрессу, выявить многообещающих кандидатов для изучения эволюции резистомы окружающей среды и получения новых активных биомолекул для борьбы с кризисом антибиотиков и ценных биокатализаторов, активных при низких температурах. Известны случаи обнаружения биокатализаторов, обладающих высокоэффективным и энергосберегающим каталитическим свойством, у адаптивных к холоду бактерий [40]. Y. Luo et al. выделили липазу В68 из Pseudomonas fluorescens, которая имеет большие перспективы применения в производстве биодизельного топлива. Поскольку производство биодизельного топлива осуществляется посредством действия липазы при температуре 35-50 °C, наличие высокоактивной липазы при низкой оптимальной температуре может обеспечить существенную экономию энергопотребления [41]. Такая психрофильная липаза (LIPB68) может представлять собой высококонкурентный энергосберегающий биокатализатор. Представители рода Achromobacter Achromobacter - род бактерий, входящий в семейство Alcaligenaceae порядка Burkholderiales. Клетки представляют собой грамотрицательные 34 Сидоренко М.Л., Русакова Д.А Разнообразие психрофильных бактерий прямые палочки и подвижны за счет использования от 1 до 20 перитрихи-альных жгутиков. Они строго аэробны и встречаются в воде (пресной и морской) и почве [31]. Из образцов почв, загрязненных органофосфонатами, выделили бактерии Achromobacter sp. MPS 12, Achromobacter xylosoxydans GPK 1 [42] и Achromobacter sp. ВКМ В-2694 [43], способные использовать в качестве единственных источников фосфора глифосфат или метилфосфоновую кислоту. Высокая деструктивная активность изолятов сохранялась при длительном хранении клеток в лиофильно высушенном состоянии, при замораживании до -20 °С [42, 43]. Эти штаммы можно использовать для очистки почвы и поверхностных вод, загрязненных фосфорорганическими соединениями. Представители рода Arthrobacter Все виды рода Arthrobacter - грамположительные облигатные аэробы, которые представляют собой палочки во время экспоненциального роста и кокки в стационарной фазе. Они обитают в почве, илах, подземных пещерах, морских, ледниковых илах, сточных водах, воздушных поверхностях растений, овощах, рыбах и различных видах животных [31]. Некоторые виды являются психрофильными и психротрофными, могут использовать ароматические соединения [44], широкий спектр органических субстратов и не требуют витаминов и других органических факторов роста [45]. Более 600 различных каротиноидов вырабатываются бактериями, водорослями, грибами, растениями и животными. Одним из представителей является психротрофный штамм Arthrobacter agilis, выделенный из морского льда Антарктики, обладающий свойством вырабатывать красный пигмент каротиноид типа С-50 [46]. На сегодняшний день каротиноиды бактериоруберинового типа С-50 выделены только из экс-тремофильных бактерий и нескольких архей, включая виды Halobacterium [47] и Haloferax [48]. Все эти организмы требуют адаптивных механизмов, чтобы справляться с экстремальными условиями окружающей среды и производством бактериоруберина, пигменты могут способствовать такой адаптации. Это наблюдение согласуется с концепцией адаптивной роли бактериоруберинов в стабилизации мембран при низкой температуре [46]. Известен еще один психрофильный штамм Arthrobacter psychro-chitiniphilus ARC 42 ВКПМ Ас-2076, который обладает способностью к деструкции нефти и нефтепродуктов при температуре от 2,5 до 20 °С, что делает его уникальным и наиболее перспективным в использовании для очистки акваторий водоемов, береговой линии, загрязненных нефтью и нефтепродуктами [49]. Штаммы рода Arthrobacter активно применяются не только как деструкторы нефти и нефтепродуктов, а также в разложении гербицидов. Их использование способствует более эффективному усвоению элементов минерального питания из почвы и удобрений, усиливает ростовые процессы, защищает от бактериальных и грибковых инфекций, повышает толе-35 Биотехнология и микробиология / Biotechnology & Microbiology рантность растений к неблагоприятным факторам среды и увеличивает продуктивность посевов [50]. Выделенный из почвы штамм Arthrobacter sp. метаболизировал диурон при температуре 18 °С, что говорит о его пси-хротолерантных свойствах. Преобразование диурона в различных концентрациях являлось более эффективным в присутствии альтернативных источников углерода и азота [51]. Представители рода Pseudoalteromonas Pseudoalteromonas представлен многочисленными морскими видами гетеротрофных грамотрицательных жгутиковых бактерий. В 1995 г. G. Gauthier et al. предложили выделить Pseudoalteromonas в качестве нового рода, который следует отделить от Alteromonas. Представители этого рода производят ряд соединений, активных против различных организмов-мишеней, которые могут принести большую пользу клеткам Pseudoalteromonas в их конкуренции за питательные вещества и колонизации поверхностей [52, 53]. Ферменты психрофильных микроорганизмов характеризуются не только выраженной термолабильностью, но и высокой удельной активностью при низких и умеренных температурах. Психрофильная а-амилаза, выделенная из Pseudoalteromonas haloplanktis, имеет в семь раз более высокие значения скорости реакции при 4 °C, чем один из ее мезофильных аналогов. В теории теплостойкость, а также высокая удельная активность являются следствием повышенной молекулярной гибкости, требующей в качестве компенсации снижения скорости реакции при низких температурах [54]. Из-за своей высокой удельной активности при низких температурах психрофильная а-амилаза представляет большой потенциальный интерес применения в промышленных процессах, таких как производство моющих средств, пивоварение и выпечка [55]. Проведены исследования, направленные на изучение свойств фермента щелочной фосфатазы, выделенной из психрофильной бактерии Pseudo-alteromonas undina. Согласно полученным данным, щелочная фосфатаза, выделенная из P. undina P2, является термолабильным ферментом и может быть использована в молекулярной биологии для удаления концевых фосфатных групп из молекул нуклеиновых кислот [56]. Представители рода Bacillus Bacillus - род грамположительных палочковидных бактерий, образующих внутриклеточные споры, являются аэробами или факультативными анаэробами, большинство представителей - хемоорганогетеротрофы. Некоторые виды способны к нитратредукции [31]. Бактерии рода Bacillus, выделенные из почвы и воды, продемонстрировали оптимальную температуру роста от -4,5 до 30 °С [57]. Психрофиль-ный фермент аланинрацемазы, выделенный из Bacillus psychrosaccharolyti-cus, обладает более высокой каталитической активностью, чем соответствующий термофильный фермент при высоких температурах [58]. 36 Сидоренко М.Л., Русакова Д.А Разнообразие психрофильных бактерий В последнее время большой научный интерес направлен на изучение и образование бактериями наночастиц различных металлов. Все процессы биосинтеза наночастиц золота, о которых сообщалось до настоящего времени, использовали температуру более 20 °С [59]. Однако в 2020 г. K.R. Das et al. провели исследования психротолерантного штамма Bacillus sp. GL1.3, который может внеклеточно синтезировать наночастицы золота размером 30-50 нм при температуре 4 °С. Эти наночастицы обладают анти-SRB-эффектом в зависимости от дозы, что может быть полезно для профилактики различных заболеваний, вызванных сульфатредуцирующими бактериями (SRB) [60]. Наночастицы золота обладают огромным потенциалом в различных областях биомедицины, иммунологии, для очистки от загрязняющих веществ и различных промышленных применений. Изучение влияния метаболитов Bacillus sp. М3, выделенного из многолетнемерзлых пород, на уровень секреции мононуклеарами про- (ФНО-а, ИЛ-1Р, ИЛ-8, ИЛ-2, ИФН-ү) и противовостпалительных (ИЛ-4, ИЛ-10) цитокинов как показателей иммунологической реактивности, представляется актуальным в перспективе создания новых иммунотропных препаратов [61]. Представители рода Clostridium Бактерии рода Clostridium - грамположительные облигатные анаэробные спорообразующие бактерии, у которых размер споры превышает поперечник клетки, и поэтому они принимают форму веретена, теннисной ракетки или булавки [31]. Clostridium принимают участие в круговороте веществ в природе. Благодаря спорообразованию они способны длительно выживать, а при определенных условиях - вегетировать в объектах окружающей среды [62]. Существуют случаи выделения психротрофных микроорганизмов рода Clostridium, которые не являются токсичными для человека, однако имеют огромное экономическое влияние на мясную промышленность. J. Wambui и R. Stephan выделили Clostridium estertheticum из вакуумно упакованного мяса. Авторы в своей работе предполагают, что именно этот микроорганизм является причиной «взрыва вакуумной упаковки с мясом», так как порча продукта происходит без нарушения температурного режима [63]. C. estertheticum предлагается применять для обнаружения порчи мясной продукции с целью предотвращения взрыва вакуумной упаковки [64]. В 2022 г. зафиксированы результаты эксперимента, показывающие, что C. estertheticum производит стабильные бактериоцины, обладающие активностью против клинически значимых патогенов [65]. Описано несколько психрофильных клостридий в Антарктических микробных матах с температурным оптимумом роста в диапазоне 4-16 °С, способных ферментировать глюкозу, фруктозу, инулин и ксилозу [66]. Психрофильные бактерии продуцируют различные соединения, чтобы защитить себя от внутриклеточного замерзания или свести к минимуму вредное воздействие формирования кристаллов льда. Один из механизмов -37 Биотехнология и микробиология / Biotechnology & Microbiology это образование антифризных белков [67]. Антифризные белки считаются перспективным биотехнологическим продуктом для применения в медицине и пищевой, косметической, топливной и других отраслях промышленности [68]. Штамм Clostridium tagluense А121 образует антифризные белки, за счет генома кодирущего четыре гена белков холодового шока, которые действуют как шапероны для мРНК во время холодового шока [69]. Одним из важных способов выживания бактерий считается образование внутриклеточных полимерных веществ (полисахаридов, липидов, полифосфатов) [1]. Известно, что Clostridium algoriphilum обладает свойством накапливать полисахарид в клетке. Предполагается, что полисахарид бактерии C. algoriphilum не только напрямую участвует в биохимических реакциях, но и может способствовать образованию оптимальной цитоплазматической вязкости для низкотемпературного протекания биохимических реакций. Это в конечном итоге приводит к выживанию C. algoriphilum в условиях криопэга (подземные природные засоленные воды, имеющие отрицательную температуру) [70]. Представители рода Micrococcus Micrococcus - род сферических бактерий семейства Micrococcaceae. Бактерии рода Micrococcus имеют грамположительные сферические клетки диаметром примерно от 0,5 до 3 мкм и обычно появляются тетрадами. Они каталазоположительны, оксидазоположительны, индолотрицательны и цитратотрицательны [31]. Все микрококки содержат «животный крахмал» гликоген, который выполняет роль запасного вещества клетки. У большинства видов оптимум температуры роста 25-30 °С. Многие виды микрококков могут развиваться при 5-8 °С [71]. На китайской станции Great-Wall в Антарктиде, выделен адаптированный к холоду Micrococcus antarcticus (штамм T2T), сохраняющий жизнеспособность при 0 °С с оптимальной температурой роста 16 °C, гидролизующий крахмал и твин (20, 40, 80) [71]. Из M. antarcticus выделили адаптированную к холоду амилазу, которая показала устойчивость к инактивации 0,1% неионогенных поверхностно-активных веществ, таких как твин 80, тритон X-100 [72]. Представители рода Psychrobacter Psychrobacter - род грамотрицательных, осмотолерантных, психро-фильных или психротолерантных аэробных бактерий, принадлежащих к семейству Moraxellaceae и классу Gammaproteobacteria. Форма представлена в виде кокков и коккобацилл [31]. E. Juni и G. Heym описали род Psychrobacter для размещения грамотрицательных, кокковых или палочковидных бактерий, обладающих строго окислительным метаболизмом, которым не хватало подвижности [73]. Известно, что бактерии рода Psychro-bacter являются облигатными или факультативными психрофилами и изо-38 Сидоренко М.Л., Русакова Д.А Разнообразие психрофильных бактерий лированы из широкого спектра мест обитания, включая пищу, клинические образцы, кожу, жабры и кишечник рыб, морскую воду в Антарктике, Антарктический морской лед и отложения Японских впадин [74]. Антарктическая морская бактерия Psychrobacter proteolyticus выделена из желудка антарктического криля (Euphasia superb). P. proteolyticus свойственно выделять адаптированную к холоду внеклеточную металлопротеиназу [75]. Известно, что металлопротеиназы - это цинк-зависимые эндопептидазы, способные разрушать все типы белков внеклеточного матрикса [76]. Соответственно, P. proteolyticus могут применяться в биотехнологии и медицине, так как метапротеиназы играют большую роль в ремоделировании тканей, ангиогенезе, пролиферации, миграции и дифференциации клеток, апоптозе, сдерживании роста опухолей [77]. Psychrobacter namhaensis можно рассматривать в качестве кормовой добавки, так как получены положительные результаты исследования по оценке эффективности в отношении показателей роста и иммунного ответа нильской тиляпии (Oreochromis niloticus) [78]. Представители рода Psychromonas Бактерии рода Psychromonas принадлежат к классу Gammaproteo-bacteria и являются психрофильными, аэротолерантными анаэробами. Клетки представляют собой грамотрицательные неподвижные крупные палочки длиной 6-14 мкм и шириной 1,25-1,5 мкм, встречающиеся поодиночке или парами [79]. На сегодняшний день описаны пятнадцать видов рода Psychromonas [80-81]. Штамм Psychromonas ingrahamii 37Т изолирован из морского льда недалеко от Пойнт-Барроу (Аляска). P. ingrahamii - грамотрицательная бактерия палочковидной формы, восстанавливает неорганические нитраты и является гетеротрофом, использующим многие органические соединения в качестве источников углерода. Показано, что P. ingrahamii растет при температуре ниже точки замерзания (самая низкая температура роста среди всех изученных до сих пор организмов) -12 °С со временем генерации 240 ч [79]. Из психрофильной бактерии P. ingrahamii выделена нуклеаза (PinNuc), обладающая способностью расщеплять различные формы нуклеиновых кислот. Этот фермент содержит шесть цистеиновых остатков, наиболее вероятно, что все они связаны с дисульфидными мостиками [81]. Психрофильная бактерия Psychromonas arctica также выживает при отрицательных температурах, адаптировав несколько защитных механизмов против замерзания, активировав белки холодового шока (Csp). Первые исследования белков холодового шока в основном изучали на Csp мезофиль-ной бактерии Escherichia coli [82], а не на психрофильных бактериях. В дальнейшем предприняли попытки понять молекулярные механизмы психрофильных бактерий, которые позволяют им выдерживать замораживание. Y.H. Jung et al. клонировали ген, кодирующий белок холодового шока CspA(Pa), из P. artica KOPRI 22215 и сверхэкспрессировали его в E. coli, это вызвало морфологическое удлинение и замедление роста кле-39 Биотехнология и микробиология / Biotechnology & Microbiology ток. Интересно, что сверхэкспрессия CspA(Pa) в E. coli, резко увеличила холодостойкость хозяина более чем в десять раз, что говорит о том, что этот белок способствует выживанию в полярных условиях [83]. Представители рода Flavobacterium Flavobacterium - это род грамотрицательных, неподвижных и подвижных палочковидных бактерий, который состоит из 130 признанных видов. Представители рода Flavobacterium широко распространены в почве и воде; обнаружены также в сыром мясе, молоке и других пищевых продуктах [31]. Психрофильные формы микроорганизмов рода Flavobacterium в основном являются представителями антарктической флоры, такие как F. gillisiae, F. degerlachei, F. frigoris, F. xinjiangense, F. xanthum, F. om-nivorum, F. frigidarium, F. gelidilacus, F. limicola, F. tegetincola, F. micromat, F. Hibernum, F. psychrophilum, F. fryxellicola и F. psychrolimnae [3, 4, 8, 84]. Flavobacterium limicola имеет диапазон температур роста от 0 до 25 °C, при этом оптимальный рост происходит при 15-20 °C. F. limicola способны гидролизовать казеин, желатин, крахмал, агар, эскулин, мочевину, мочевую кислоту и тирозин, а также лизировать клетки Escherichia coli и Pseudomonas putida. Интересен тот факт, что для F. limicola характерно увеличение секреции протеазы по мере снижения температуры [84]. F. limicola является перспективным источником холодоактивной протеазы, которая в теории может использоваться в специфических биотрансформациях и биоремедиациях окружающей среды [85]. В 2002 г. из фекалий антарктических пингвинов выделен Flavobacterium faecale WV33(T), обладающий агаразной активностью при 16 °C [86]. В ходе скрининга психрофильных микроорганизмов, выделенных из загрязненной нефтью арктической почвы, обнаружили бактериальный штамм, обладающий свойством разлагать дизельное топливо, для которого предложили название Flavobacterium petroe [87]. Из психрофильной бактерии Flavobacterium sp. YS-80-122 выделен новый фермент - і-каррагеназа (CgiF), который проявляет холодоактивные и термоустойчивые свойства. Холодовая адаптация и термоустойчивость делают его отличным кандидатом для промышленного применения в производстве олигосахаридов і-каррагена из полисахаридов морских водорослей [88]. Психрофильные метанотрофные микроорганизмы Метанотрофы - уникальная группа микроорганизмов, способных использовать метан в качестве единственного источника углерода и энергии. Окисление метана осуществляется ими как в аэробных, так и в анаэробных условиях [89]. Чистые культуры психрофильных и психротолерантных метанотрофов выделены и охарактеризованы как новые роды и виды: Methylobacter psychrophilus, Methylosphaera hansonii, Methylocella palustris, Methylocella silvestris, Methylocella tundrae, Methylocapsa acidiphila и Methylomonas scandinavica [90]. 40 Сидоренко М.Л., Русакова Д.А Разнообразие психрофильных бактерий Систематические исследования метанотрофов психросферы привели к выделению из тундровой почвы первого психрофильного метанотрофа Methylobacter psychrophilus [91]. M. psychrophilus растет при температурах от 3,5 до 20 °С, оптимально при 5-10 °С. Согласно проведенному полному генетическому анализу, штамм M. psychrophilus SPH1T обладает геномным потенциалом для биосинтеза гопаноидов, который необходим для поддержания внутрицитоплазматических мембран [92]. И.Ю. Ошкин с соавт. (Oshkin et al.) выделили из антарктических озер 8 штаммов метанотрофных микроорганизмов, описанных в качестве нового вида Methylosphaera hansonii. Клетки M. hansonii представлены неподвижными крупными кокками, ассимилирующими углерод по рибулозомоно-фосфатному пути. Штаммы M. hansonii являются психрофильными, с оптимальной температурой роста 10-13°C и максимальной 16-21 °С [93]. Также сообщалось о способности M. hansonii к биосинтезу специфических 4,4-диметилированных и 4-метилированных стеролов [94]. Биосферная роль представителей психрофильных метаногенов намного превосходит таковую у термофилов, так как именно холодовые экосистемы являются основными источниками метана, поступающего в атмосферу Земли, однако метаболизм и механизм регуляции активности метанотро-фов холодных экосистем остаются мало изученными [93]. Заключение Обзор литературы свидетельствует о том, что в настоящее время облигатные и факультативные психрофилы (психротрофы) и их холодоактивные ферменты представляют научный интерес во всем мире. Существенная часть исследований носит общее понимание распространения психро-фильных бактерий и локальное изучение ферментативной активности. В данном обзоре мы рассмотрели разнообразие промышленно значимых психрофильных бактерий, структурируя их по родам. Разнообразие психрофильных бактерий широко. Среди них встречаются представители различных родов и видов, которые представлены палочковидными и кокковыми формами, образующие споры и не образующие их, грамотрицательные и грамположительные, строгие аэробы, факультативные и строгие анаэробы. Обнаружены также фаги психрофильных бактерий. Реакция бактерий на снижение температуры имеет общие черты. Однотипность реакции на действие холода самых разных видов и родов бактерий подтверждается данными, приведенными в вышеизложенном материале. Холод индуцирует гены холодового шока, в результате этого происходят значительные изменения в регуляции синтеза белков, подавляется синтез основных белков микробной клетки. Однако синтезируется множество новых белков - белков холодового шока. В настоящее время холодоактивные ферменты имеют огромное значение. Эффективность применения в промышленности таких холодоактивных ферментов, как липаза, амилаза, протеаза, эстераза, фосфатаза, рас-41 Биотехнология и микробиология / Biotechnology & Microbiology смотрена во многих работах. Эти ферменты активно используются в производстве бытовой химии, сельском хозяйстве, фармацевтике и других отраслях народного хозяйства. Скрининг новых микроорганизмов и их холодоактивных ферментов открывает новые и более простые пути для синтетических процессов. Следовательно, это может дать новые решения биотехнологических и экологических проблем.

Ключевые слова

среда обитания, разнообразие, холодоактивные ферменты, психрофильные бактерии

Авторы

ФИООрганизацияДополнительноE-mail
Сидоренко Марина ЛеонидовнаФедеральный научный центр биоразнообразия наземной биоты Восточной Азии ДВО РАНканд. биол. наук, в.н.с. сектора почвоведения и экологии почвsidorenko@biosoil.ru
Русакова Дарья АлександровнаФедеральный научный центр биоразнообразия наземной биоты Восточной Азии ДВО РАН; Дальневосточный федеральный университетведущий инженер сектора почвоведения и экологии почв; аспирант кафедры биоразнообразия и морских биоресурсовdashka93.1993@mail.ru
Всего: 2

Ссылки

Schouten S., Bowman J.P., Rijpstra W.I., Sinninghe Damste J.S. Sterols in a psychrophilic methanotroph, Methylosphaera hansonii // FEMS Microbiology Letters. 2000. Vol. 186, № 2. PP. 193-195. doi: 10.1111/j.1574-6968.2000.tb09103.x
Oshkin I.Y., Miroshnikov K.K., Belova S.E. Draft genome sequence of Methylovulum psychrotolerans Sph1<sup>T</sup> an obligate methanotroph from low-temperature environments // Microbiology Resource Announcements. 2018. Vol. 6, № 11. РР. e01488-17. doi: 10.1128/genomeA.01488-17
Турова Т.П., Омельченко М.В., Фегединг К.В., Васильева Л.В. Филогенетическое положение психрофильного метанотрофа Methylobacter psychrophilus sp. nov. // Микробиология. 1999. Т. 68, № 4. С. 568-570.
Омельченко М.В., Васильева Л.В., Заварзин Г.А., Савельева Н.Д., Лысенко A.M., Митюшина Л. Л. Новый психрофильный метанотроф рода Methylobacter // Микробиология. 1996. Т. 65, № 3. С. 384-389. doi: 10.1099 /00221287-143-4-1451
Бакунина М.С., Пономарева А. Л., Дубовчук С.С., Еськова А.И., Шакиров P.B., Обжиров А.И. Особенности психрофильных и термофильных метанотрофных микроорганизмов // Вестник ДВО PAH. 2020. № 5. С. 43-50. doi: 10.37102/ 08697698.2020.213.5.004
Каллистова А.Ю., Меркельa А.Ю., Тарновецкий И.Ю., Пименовa Н.В. Образование и окисление метана прокариотами // Микробиология. 2017. Т. 6, № 86. С. 661-683. doi: 10.7868/S002636561706009X
Li S., Hao J., Sun M. Cloning and characterization of a new cold-adapted and thermotolerant i-carrageenase from marine bacterium Flavobacterium sp. YS-80-122 // International journal of biological macromolecules. 2017. № 102. PP. 1059-1065. doi: 10.1016/j.ijbiomac.2017.04.070
Chaudhary D.K., Kim D.U., Kim D., Kim J. Flavobacterium petrolei sp. nov., a novel psychrophilic, diesel-degrading bacterium isolated from oil-contaminated Arctic soil // Scientific Reports. 2019. Vol. 9, № 1. P. 4134. doi: 10.1038/s41598-019-40667-7
Kim J.H., Choi B.H., Jo M., Kim S.C., Lee P.C. Flavobacterium faecale sp. nov., an agarase-producing species isolated from stools of Antarctic penguins // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2014. Vol. 64, № 8. PP. 2884-2890. doi: 10.1099/ijs.0.059618-0
Chattopadhyay M.K., Reddy G.S., Shivaji S. Psychrophilic bacteria: Biodiversity, molecular basis of cold adaptation and biotechnological implications // Current Biotechnology. 2014. Vol. 1, № 3. PP. 100-116. doi: 10.2174/22115501113026660039
Tamaki H., Hanada S., Kamagata Y., Nakamura K., Nomura N., Nakano K., Matsumura M. Flavobacterium limicola sp. nov., a psychrophilic, organic-polymer-degrading bacterium isolated from freshwater sediments // Systematic and Evolutionary Microbiology. 2003. Vol. 53, № 2. PP. 519-526. doi: 10.1099/ijs.0.02369-0
Хайруллин Р.Ф., Киямова Р.Г., Ризванов А.А. Экспрессия рекомбинантных белков в E. coli : учеб. пособие. Казань : Изд-во Казан. ун-а, 2018. 142 с.
Jung Y.H., Protein J. Overexpression of cold shock protein a of Psychromonas arctica KOPRI 22215 confers cold-resistance // The Protein Journal. 2010. Vol. 29, № 2. PP. 136-42. doi: 10.1007/s10930-010-9233-9
Maciejewska N., Walkusz R., Olszewski M., Szymanska A. New nuclease from extreme ly psychrophilic microorganism Psychromonas ingrahamii 37: Identification and characterization // Molecular Biotechnology. 2019 Vol. 61, № 2. PP. 122-133. doi: 10.1007/s12033-018-0142-z
Breezee J., Cady N., Staley J.T. Subfreezing growth of the sea ice bacterium Psychromonas ingrahamii // Microbial Ecology. 2004. Vol. 47, № 3. РР. 300-304. doi: 10.1007/s00248-003-1040-9
Auman A.J., Breezee J.L., Gosink J.J., Kmpfer P., Staley J.T. Psychromonas ingrahamii sp. nov., a novel gas vacuolate, psychrophilic bacterium isolated from Arctic polar sea ice // Evolutionary Microbiology. 2006. Vol. 56, № 5. РР. 1001-1007. doi: 10.1099/ijs.0.64068-0
Makled S.O, Hamdan A.M, El-Sayed A.M, Hafez E.E. Evaluation of marine psychrophile, Psychrobacter namhaensis SO89, as a probiotic in Nile tilapia (Oreochromis niloticus) diets // Fish Shellfish Immunology. 2017. № 61. PP. 194-200. doi: 10.1016/j.fsi.2017.01.001
Abdel-Hamid N.M., Abass S.A. Matrix metalloproteinase contribution in management of cancer proliferation, metastasis and drug targeting // Molecular Biology Reports. 2021. Vol. 48, № 9. РР. 6525-6538. doi: 10.1007/s11033-021-06635-z
Лайнен Г.Р. Матриксные металлопротеиназы и фибринолитическая активность клеток // Биохимия. 2002. Т. 67, № 1. С. 107-115.
Denner E.B., Mark B., Busse H.J., Turkiewicz M., Lubitz W. Psychrobacterproteolyticus sp. nov., a psychrotrophic, halotolerant bacterium isolated from the antarctic krill Euphausia superba Dana, excreting a cold-adapted metalloprotease // Systematic and Applied Microbiology. 2001. Vol. 24, № 1. PP. 44-53. doi: 10.1078/0723-2020-00006
Yumoto I., Hirota K., Sogabe Y., Nodasaka Y., Yokota Y., Hoshino T. Psychrobacter okhotskensis sp. nov., a lipaseproducing facultative psychrophile isolated from the coast of the Okhotsk Sea // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2003. Vol. 53, № 6. РР. 1985-1989. doi: 10.1099/ijs.0.02686-0
Juni E., Heym A. Psychrobacter immobilis gen. nov., sp. Nov.: Genospecies composed of gram-negative, aerobic, oxidase-positive coccobacilli // Microbiological Societies. 1986. Vol. 3, № 36. РР. 388-391. doi: org/10.1099/0020 7713-36-3-388
Fan H.X., Liu Y., Liu Z.P. Optimization of fermentation conditions for cold-adapted amylase production by Micrococcus antarcticus and its enzymatic properties // Chinese Journal of Environmental Science. 2009. № 8. РР. 2473-2478.
Liu H., Xu Y., Ma Y., Zhou P. Characterization of Micrococcus antarcticus sp. nov., a psychrophilic bacterium from Antarctica // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2000. Vol. 50, № 2. РР. 715-719. doi: 10.1099/00207713-50-2-715
Печерицына С.А., Архипова О.В., Сузина Н.Е., Лысанская В.Я., Лауринавичюс К. С., Щербакова В. А. Внутриклеточный полисахарид анаэробного психрофила Clostridium algoriphilum // Микробиология. 2011. Т. 1, № 80. С. 40-46. doi: 10.1134/S0026261710061050
Murakami T., Mori H., Shcherbakova V.A., Yoshimura Y., Segawa T. Draft genome sequence of Clostridium tagluense strain A121T, isolated from a permafrost core in the canadian high Arctic. Microbiology Resource Announcements. 2019. Vol. 8, № 5. РР. e01630-18. doi: 10.1128/MRA.01630-18
Shcherbakova V., Troshina O. Biotechnological perspectives of microorganisms isolated from the Polar Regions // Microbiology Australia. 2018. Vol. 39, № 3. РР. 137-140. doi: 10.1071/MA18042
Riley M., Staley J.T., Danchin A., Wang T.Z., Brettin T.S., Hauser L.J., Land M.L., Thompson L.S. Genomics of an extreme psychrophile Psychromonas ingrahamii // BMC Genomics. 2008. Vol. 9, № 210. Р. 19. doi: 10.1186/1471-2164-9-210
Spring S., Merkhoffer B., Weiss N., Kroppenstedt R.M., Hippe H., Stackebrandt E. Characterization of novel psychrophilic clostridia from an Antarctic microbial mat: .... // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2003. Vol. 53, № 4. PP. 1019-1029. doi: 10.1099/ijs.0.02554-0.
Wambui J., Stevens M.J.A., Sieber S., Cernela N., Perreten V., Stephan R. Targeted genome mining reveals the psychrophilic Clostridium estertheticum complex as a potential source for novel bacteriocins, including cesin A and estercticin A // Frontiers in Microbiology. 2022. Vol. 12, № 801467. Р. eCollection 2021. doi: 10.3389/fmicb. 2021.801467
Broda D.M., Delacy K.M., Bell R.G., Braggins T.J., Cook R.L. Psychrotrophic Clostridium spp. associated with «blown pack» spoilage of chilled vacuum-packed red meats and dog rolls in gas-impermeable plastic casings // International Journal of Food Microbiology. 1996. Vol. 29, № 2-3. РР. 335-352. doi: 10.1016/0168-1605(95)00 070-4.
Wambui J., Stephan R. Relevant aspects of Clostridium estertheticum as a specific spoilage organism of vacuum-packed meat // Microorganisms. 2019. Vol. 7, № 5. Р. 142. doi: 10.3390/microorganisms7050142
Dobrovol’skaya T.G., Zvyagintsev D.G., Chernov I.Yu., Golovchenko A.V., Zenova G.M., Lysak L.V., Manucharova N.A., Marfenina O.E., Polyanskaya L.M., Stepanov A.L., Umarov M.M. The role of microorganisms in the ecological functions of soils // Eurasian Soil Science. 2015. Vol. 48, №. 9, PP. 959-967. doi: 10.1134/ S1064229315090033
Колыванова С.С., Каленова Л.Ф. Влияние метаболитов микроорганизмов многолетнемерзлых пород на синтез цитокинов мононуклеарными клетками периферической крови человека in vitro // Медицинская иммунология. 2021. Т. 23, № 1. С. 137-142. doi: org/10.15789/1563-0625-IOM-2014
Das K.R., Tiwari A.K., Kerkar S. Psychrotolerant Antarctic bacteria biosynthesize gold nanoparticles active against sulphate reducing bacteria // Preparative Biochemistry & Biotechnology. 2020. Vol. 50, № 5. РР. 438-444. doi: 10.1080/10826068.2019.1706559.
Радциг М. А., Кокшарова О. А., Надточенко В. А., Хмель И. А. Получение наночастиц золота методом биогенеза с использованием бактерий // Микробиология. 2016. Т. 85, № 1. С. 42-49. doi: 10.7868/S002636 5616010092
Okubo Y., Yokoigawa K., Esaki N., Soda K., Misono H. High catalytic activity of alanine racemase from psychrophilic Bacillus psychrosaccharolyticus at high temperatures in the presence of pyridoxal 5'-phosphate / FEMS Microbiology Letters. 2000. Vol. 192, № 2. PP. 169-173. doi: org/10.1111/j.1574-6968.2000.tb09377.x
Larkin J.M., Stokes J.L. Isolation of psychrophilic species of Bacillus // Journal of bacteriology. 1966. Vol. 91, №. 5. РР. 1667-1671. doi: 10.1128/jb.91.5.1667-1671.1966
Struvay C., Feller G. Optimization to low temperature activity in psychrophilic enzymes // International Journal of Molecular Sciences. 2012. Vol. 13, № 9. РР. 11643-11665.
Зернов Ю.П., Дедков В.С., Антонова Ю.А., Михненкова Н.А., Дегтярев С.Х. Термолабильная щелочная фосфатаза из психрофильного микроорганизма Alteromonas undina P2 // Биотехнология. 2005. № 2. С. 38-43. doi: 10.3390/ijms 130911643
Kumar S., Khare S.K. Chloride activated halophilic a-amylase from Marinobacter sp. EMB8: Production optimization and nanoimmobilization for efficient starch hydrolysis // Enzyme Research. 2015. Vol. 2015. Р. 9. doi: org/10.1155/2015/859485
Gauthier G., Gauthier M., Christen R. Phylogenetic analysis of the genera Alteromonas, Shewanella, and Moritella using genes coding for small-subunit rRNA sequences and division of the genus Alteromonas into two genera, Alteromonas (emended) and Pseudoalteromonas gen. nov., and proposal of twelve new species combinations // International Journal of Systematic Bacteriology. 1995. Vol. 45, № 4. РР. 755-761. doi: 10.1099/00207713-45-4-755
Beurmann S., Ushijima B., Svoboda C.M., Videau P., Smith A.M., Donachie S.P., Aeby G.S., Callahan S.M. Pseudoalteromonaspiratica sp. nov., a budding, prosthecate bacterium from diseased Montipora capitata, and emended description of the genus Pseudoalteromonas // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2017. Vol. 67, № 8. РР. 268-2688. doi: 10.1099/ijsem.0.001995
Lamrani M.D., Pesce S., Rouard N., Laurent F.M. Evidence for cooperative mineralization of diuron by Arthrobacter sp. BS2 and Achromobacter sp. SP1 isolated from a mixed culture enriched from diuron exposed environments // Chemosphere. 2014. № 117. РР. 208-215. doi: org/10.1016/j.chemosphere.2014.06.080
Воробейков Г.А., Павлова Т.К., Кондрат С.В., Лебедев В.Н., Юргина В.С., Муратова Р.Р., Макаров П.Н., Дубенская Г.И., Хмелевская И.А. Исследование эффективности штаммов ассоциативных ризобактерий в посевах различных видов растений // Известия Российского государственного педагогического университета им. А.И. Герцена. 2011. № 141. С. 114-123.
Шестаков А.И., Сережкин И.Н., Ламова Я.А., Гавирова Л.А., Шестакова О.О., Ершова О. А., Шабалин Н.В., Исаченко А.И.; ООО «Арктический научно-проектный центр шельфовых разработок». штамм Arthrobacter psychrochitiniphilus ARC 42 ВКПМ АС-2076 - деструктор нефти и нефтепродуктов. Патент: Ru 2699990 C. № заявки 2018140400; Заявл. 15.11.2018; Опубл.11.09.2019. Бюл. № 26.
Ronnekleiv M., Lenes M., Norgard S., Liaaen-Jensen S., Three dodecaene C50-carotenoids from halophilic bacteria // Phytochemistry. 1995. Vol. 39, № 3. РР. 631-634. doi: 003194229500975D
Kelly M., Norgard S., Liaaen-Jensen S. Bacterial carotenoids XXXI C50 carotenoids of Halobacterium salinarium, especially bacterioruberin // Acta Chemica Scandinavica. 1970. № 24. РР. 2169-2182. doi: 10.3891/acta.chem.scand.24-2169.
Khasaeva F., Vasilyuk N., Terentyev P., Troshina M., Lebedev A.T. A novel soil bacterial strain degrading pyridines // Environmental Chemistry Letters. 2011. № 9. PP. 439-445. doi: 10.1007/s10311-010-0299-6
Flegler A., Lipski A. The C50 carotenoid bacterioruberin regulates membrane fluidity in pink-pigmented Arthrobacter species // Archives of Microbiology. 2022. Vol. 204, № 1. Р. 70. doi: 10.1007/s00203-021-02719-3
O'Loughlin E.J., Sims G.K., Traina S.J. Biodegradation of 2-methyl, 2-ethyl, and 2-hydroxypyridine by an Arthrobacter sp. isolated from subsurface sediment // Biodegradation. 1999. Vol. 10, № 2. PP. 93-104. doi: 10.1023/a:1008309026751
Sviridov A.V., Shushkova T.V., Zelenkova N.F., Vinokurova N.G., Morgunov I.G., Ermakova I.T., Leontievsky A.A. Distribution of glyphosate and methylphosphonate catabolism systems in soil bacteria Ochrobactrum anthropi and Achromobacter sp. // Applied Microbiology and Biotechnology. 2012. № 93. PP. 787-796. doi: 10.1007/s00253-011-3485-y
Ермакова И.Т., Шушкова Т.В., Леонтьевский А.А. Микробная деструкция органо-фосфонатов почвенными бактериями // Микробиология. 2008. Т. 77, № 5. С. 689695. doi: 10.1134/S0026261708050160
Luo Y., Zheng Y., Jiang Zh., Ma Y., Wei D. A novel psychrophilic lipase from Pseudomonas fluorescens with unique property in chiral resolution and biodiesel production via transesterification // Applied Microbiology and Biotechnology. 2006. Vol. 73, № 2. PP. 349-355. doi: 10.1007/s00253-006-0478-3
Kumar S., Suyal D.C., Yadav A., Shouche Y., Goel R. Psychrophilic Pseudomonas helmanticensis proteome under simulated cold stress // Cell Stress Chaperones. 2020. Vol. 25, № 6. PP. 1025-1032. doi: 10.1007/s12192-020-01139-4
Mhetras N., Mapare V., Gokhale D. Cold Active Lipases: Biocatalytic Tools for Greener Technology // Applied Biochemistry and Biotechnology. 2021. Vol. 197, № 7. PP. 22452266. doi: 10.1007/s12010-021-03516-w
Lee J., Cho Y.J., Yang J., Jung Y.J., Hong S.G., Kim O.S.Complete genome sequence of Pseudomonas antarctica PAMC 27494, a bacteriocin-producing psychrophile isolated from Antarctica // Journal of Biotechnology. 2017. № 259. PP.15-18.
Хрульнова С.А., Манухов И.В., Завильгельский Г.Б. Quorum sensing регуляция экспрессии LuK-генов и структура LuK-оперона у морских бактерий A. iivibrio // Генетика. 2011. Т. 12, № 47. С. 1596-1603. doi: 10.1134/S1022795411120052
Цветкова Ю.Д. Особенности культивирования светящихся бактерий как перспективных продуцентов хитиназы для борьбы с патогенами растений // Актуальные проблемы гуманитарных и естественных наук. 2014. № 6-1. С. 113-116.
Skanes A.C., Minniti G., Loose J.S., Mekasha S., Bissaro B., Mathiesen G., Arntzen M., Vaaje-Kolstad G. The fish pathogen Aliivibrio salmonicida LFI1238 can degrade and metabolize chitin despite gene disruption in the chitinolytic pathway // Applied and Environmental Microbiology. 2021. Vol. 87, № 19. P. 56. doi: 10.1128/AEM.00529-21
Karlsen C., Espelid S., Willassen N.P., Paulsen S.M. Identification and cloning of immunogenic Aliivibrio salmonicida Pallike protein present in profiled outer membrane and secreted subproteome // Diseases of aquatic organisms. 2011. Vol. 93, № 3. PP. 215-223. doi: 10.3354/dao02302.
Urbanczyk H., Ast J.C., Higgins M.J., Carson J., Dunlap P.V. Reclassification of Vibrio fischeri, Vibrio logei, Vibrio salmonicida and Vibrio wodanis as Aliivibrio fischeri gen. nov., comb. nov., Allivibrio logei comb. nov., Allivibrio salmonicida comb. nov. and Aliivibrio wodanis comb. nov. // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2007. № 57. PP. 2823-2829. doi: 10.1099/ijs.0.65081-0
Yumoto I., Iwata H., Sawabe T., Ueno K., Ichise N., Matsuyama H., Okuyama H., Kawasaki K. Characterization of a facultatively psychrophilic bacterium, Vibrio rumoiensis sp. nov., that exhibits high catalase activity // Applied and Environmental Microbiology. 1999. Vol. 65, № 1. PP. 67-72. doi: 10.1128/AEM.65.1.67-72.1999
Определитель бактерий Берджи : в 2 т. Т. 1: пер. с англ. / под ред. Дж. Хоулта, Н. Крита, П. Снита, Дж. Стейли, С. Уилльямса. М.: Мир, 1997. 761 с.
Мямин В.Е., Сидоренко А.В., Валентович Л.Н., Гигиняк Ю.Г., Новик Г.И., Коломиец Э.И. Характеристика микроорганизмов, выделенных из «зеленого снега» прибрежной зоны Восточной Антарктиды // Микробные биотехнологии: фундаментальные и прикладные аспекты : сб. науч. тр. Минск : Беларуская наука, 2016. С. 106-125.
Olsen R.H., Metcalf S.E., Todd J.K. Characteristics of bacteriophages attacking psychrophilic and mesophilic Pseudomonads // Journal of Virology. 1968. Vol. 2, № 4. PP. 357-364.
Онищенко О.М., Киприанова Е.А., Ярошенко Л.В. Психрофильные бактерии родов Alteromonas и Psychrobacter, выделенных из воды Черного моря // Морской экологический журнал. 2008. Т. 7, № 1. С. 56-59.
Кузьмина Л.Ю., Галимзянова Н.Ф., Абдуллин Ш.Р., Рябова А.С. Микробиота пещеры Киндерлинская (Республика Башкортостан) // Микробиология. 2012. № 81. С. 273-281. doi: 10.1134/S0026261712010109
Мямин В.Е., Никитина Л.В., Чернявская М.И., Занюк А.А., Титок М.А., Лозюк С.К., Сидоренко А.В., Валентович Л.Н., Долгих А.В. Микробиологические исследования в районе участка Вечерний оазиса Холмы Тала (Восточная Антарктида) // Труды БГУ. Физиологические, биохимические и молекулярные основы функционирования биосистем. 2014. Т. 9, № 2. С. 58-67.
Ланкина Е.П., Хижняк С.В. Сравнительный анализ встречаемости бактерий-антагонистов к фитопатогенным грибам в бактериальных сообществах почв, почвоподобном субстрате и карстовых пещерах // Вестник КрасГАУ. 2013. Т. 2, № 77. С. 65-68.
Paun V.I., Lavin P., Chifriuc M.C., Purcarea C. First report on antibiotic resistance and antimicrobial activity of bacterial isolates from 13,000-year old cave ice core // Scientific Reports. 2021. № 11. P. 514. doi: org/10.1038/s41598-020-79754-5
Ewert M., Deming J.W. Sea ice microorganisms: environmental constraints and extracellular responses // Biology (Basel). 2013. Vol. 2, № 2. РР. 603-628. doi: 10.3390/biology2020603
Хижняк С.В., Илиенц И.Р., Рубчевская Л.П. Карстовые пещеры как источник психрофильных штаммов для ферментативной переработки сырья зерноперерабатывающей и плодоовощной отрасли и повышения пищевой биологической ценности продукции // Вестник КраеГАУ. 2012. № 5. С. 411-415.
Хижняк С.В., Таушева И.В., Березикова А.А. Психрофильные и психротолерантные гетеротрофные микрорганизмы карстовых полостей Средней Сибири // Экология. 2003. № 4. С. 261-266. doi: 10.1023/A:102 4537513439
Bajerski F., Ganzert L., Mangelsdorf K., Padur L., Lipski A., Wagner D. Chryseobacterium frigidisoli sp. nov., a psychrotolerant species of the family Flavobacteriaceae isolated from sandy permafrost from a glacier forefield // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2013. Vol. 63, № 7. PР. 2666-2671. doi: 10.1099/ijs.0.046904-0
Kmpfer P., Lodders N., Vaneechoutte M., Wauters G. Transfer of Sejongia antarctica, Sejongia jeonii and Sejongia marina to the genus Chryseobacterium as Chryseobacterium antarcticum comb. nov., Chryseobacterium jeonii comb. nov. and Chryseobacterium marinum comb. nov. // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2009. Vol. 59, № 9. PP. 2238-2240. doi: 10.1099/ijs.0.009142-0
Bowman J.P., Nichols D.S. Novel members of the family Flavobacteriaceae from Antarctic maritime habitats including Subsaximicrobium wynnwilliamsii gen. nov., sp. nov., Subsaximicrobium saxinquilinus sp. nov., Subsaxibacter broadyi gen. nov., sp. nov., Lacinutrix copepodicola gen. nov., sp. nov., and novel species of the genera Bizionia, Gelidibacter and Gillisia // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2005. Vol. 55, № 4. PP. 1471-1486. doi: 10.1099/ijs.0.63527-0
Парфенова В.В., Теркина Т.Я., Косторнова И.Г., Никулина И.Г., Черных В.И., Максимова Э.А. Микробное сообщество пресноводных губок оз. Байкал // Микробиология. 2008. № 4. С. 435-441. doi: 10.1134/S 1062359008040079
Берестовская Ю.Ю., Васильева Л.В., Честных О.В. Метанотрофы психрофильного микробного сообщества заполярной тундры России // Микробиология. 2002. Т. 71, № 4. С. 538-544. doi: 10.1023/A:1019805929529
Berestovskaya Y.Y., Lysenko A.M., Tourova T.P., Vasil'eva L.V. A Psychrotolerant Caulobacter sp. from Russian polar tundra soil // Microbiology. 2006. Vol. 75, № 3. PP. 317322. doi: 10.1134/S0026261706030131
Zhang D.C., Schumann P., Liu H.C. Arthrobacter alpinus sp. nov., a psychrophilic bacterium isolated from alpine soil // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2010. Vol. 60, № 9. РР. 2149-2153. doi: 10.1099/ijs.0.017178-0
Сорокин Н.Д., Афанасова Е.Н. Микробиологическая диагностика состояния почв и филлосферы лесных экосистем Сибири // Известия РАН. Серия биологическая. 2012. № 1. С. 100-108. doi: 10.1134/S1062359012010086
Tapia-Vazquez I., Sanchez-Cruz R., Arroyo-Dominguez M., Lira-Ruan V., Sanchez-Reyes A., Del Rayo Sanchez-Carbente M., Padilla-Chacon D., Batista-Garcia R.A., Folch-Mallol J.L. Isolation and characterization of psychrophilic and psychrotolerant plant-growth promoting microorganisms from a high-altitude volcano crater in Mexico // Microbiological Research. 2020. № 232. Р. 126394. doi: 10.1016/j.micres.2019.126394
Adapa V., Ramya L.N., Pulicherla K.K., Rao K.R.S.S. Cold-Adapted Fungi: Evaluation and Comparison of Their Habitats, Molecular Adaptations and Industrial Applications // Applied Biochemistry and Biotechnology. 2014. Vol. 172, № 5. PP. 2324-2337. doi: 10.1007/s12010-013-0685-1
Саралов А.И. Адаптивность экстремофилов Archaea и Bacteria // Микробиология. 2019. T. 88, № 4. С. 377-400. doi: 10.1134/S0026365619040104
Wang S.Y., Hu W., Lin X.Y., Wu Z.H., Li Y.Z. A novel cold-active xylanase from the cellulolytic myxobacterium Sorangium cellulosum So9733-1: gene cloning, expression, and enzymatic characterization // Applied Microbiology and Biotechnology. 2012. Vol. 93, № 4. PP. 1503-1512. doi: 10.1007/s00253-011-3480-3
D'Amico S., Collins T., Marx J.C., Feller G., Gerday C. Psychrophilic microorganisms: challenges for life // EMBO reports. 2006. Vol. 7, № 4. РР. 385-389. doi: 10.1038/sj.embor. 7400662
Klein W.M., Weber H., Marahiel M.A. Cold shock response of Bacillus subtilis: isoleucine-dependent switch in the fatty acid branching pattern for membrane adaptation to low temperatures // Journal of Bacteriology. 1999. Vol. 181, № 17. РР. 5341-5349. doi: 10.1128/JB. 181.17.5341-5349.1999
Gohrbandt M., Lipski A., Grimshaw J.W., Buttress J.A, Baig Z., Herkenhoffl B., Walter S., Kurre R., Deckers-Hebestreit G., Strahl H. Low membrane fluidity triggers lipid phase separation and protein segregation in living bacteria // The EMBO Journal. 2022. Vol. 4, № 5. Р. е109800. doi: 10.15252/embj.2021109800
Хижняк С.В., Илиенц И.Р., Рубчевская Л.П., Меняйло Л.Н. Карстовые пещеры как источник психрофильных штаммов для ферментативной переработки сырья зерноперерабатывающей и плодоовощной отрасли и повышения пищевой биологической ценности продукции // Вестник КрасГАУ. 2012. № 5. С. 411-415.
Заварзин Г.А., Колотилова Н.Н. Введение в природоведческую микробиологию : учеб. пособие. М. : Университет, 2001. 256 с.
Ермилова Е.В. Молекулярные аспекты адаптации прокариот. СПб. : Химиздат, 2012. 341 с.
Ксенофонтов Б.С. Основы микробиологии и экологической биотехнологии : учеб. пособие. М. : Инфра-М Форум, 2015. 224 с.
Hassan N. Temperature driven membrane lipid adaptation in glacial psychrophilic bacteria // Frontiers in Microbiology. 2020. № 11. Р. 824. doi: 10.3389/fmicb.2020.00824.
 Разнообразие психрофильных бактерий и их биотехнологический потенциал (обзор) | Вестник Томского государственного университета. Биология. 2022. №  58. DOI: 10.17223/19988591/58/2

Разнообразие психрофильных бактерий и их биотехнологический потенциал (обзор) | Вестник Томского государственного университета. Биология. 2022. № 58. DOI: 10.17223/19988591/58/2