Влияние физиологически активныхсоединений на рост и уровень тритерпеновых сапонинов и флавоноидовклеточной культуры Atragene speciosa Weinm | Вестник Томского государственного университета. Биология. 2008. № 3 (4).

Влияние физиологически активныхсоединений на рост и уровень тритерпеновых сапонинов и флавоноидовклеточной культуры Atragene speciosa Weinm

Аннотация. Получены клеточные культуры Atragene speciosa Weinm. (княжик сибирский) in vitro, обладающие стабильной скоростью роста для дальнейшего исследования фармакологической активности экстракта на их основе. Оптимизирован состав питательной среды для активного роста клеточных культур княжика сибирского in vitro, полученных на основе эксплантов боковых почек и стебля годичных побегов дикорастущих интактных растений Atragene speciosa Weinm. С целью оптимизации продукционного процесса исследовано влияние жасмоновой кислоты, 24-эпибрассинолида. Показана эффективность 24-эпибрассинолида гуминовых кислот, препарата «Силк» на накопление тритерпеновых сапонинов и флавоноидов. Содержание тритерпеновых сапонинов в культуре клеток сопоставимо с уровнем этих веществ в интактном дикорастущем растении.

Influence of physiological activity substanceson growth and level of triterpenoid saponins and flavonoides Atragene speciosaWeinm. cell cultures .pdf Княжик сибирский (Atragene speciosa Weinm.) - многолетняя лиана флоры Сибири. Необходимость введения этого вида в асептическую культуру in vitro обусловлена возможностью получения физиологически активных веществ (тритерпеновых гликозидов - сапонинов, фенолоспиртов и их гликозидов, флавоноидов) для создания в дальнейшем ноотропного и адаптогенного фитопрепарата. Atragene speciosa Weinm. - вид с азиатским ареалом, природные заросли которого разрежены и занимают небольшие площади, а интродукция, в связи с морфологическими особенностями стебля, затруднена.Важным моментом при культивировании клеточных культур является оптимизация продукционного процесса добавлением в питательную среду физиологически активных соединений, в том числе гормонов. При этом особое внимание уделяется регуляторам роста (жасмоновая кислота, 24-эпибрас-синнолид, гуминовые кислоты и др.).Статья В.Ю. Дорофеева, Р.А. Карначук, И.В. Шиловой «Элементный состав клеток кал-лусной культуры княжика сибирского (Atragene speciosa Weinm.) in vitro», опубликованная в Вестнике Томского государственного университета. Биология. 2008. № 2 (3) (С. 1217), написана по материалам исследований, поддержанных грантом ФЦНТП (Государственный контракт № 02.512.11.2220 от 4 июля 2008 г.).Жизнеспособность культуры устанавливали по стандартной методике путём окрашивания клеток метиленовым синим [3]. Количество клеток считали в камере Фукса-Розенталя [4].Микроскопический анализ крупноагрегированной суспензии проводили после мацерации в смеси 0,2% целлюлазы и 0,2% пектиназы (1:1) в течение 1 ч при 26°С. Для получения изотонического раствора добавляли маннит (90 г/л) и СаС12 (1,480 г/л). Измеряли размеры клеток для определения их объёма [5].Результаты и их обсуждениеПереход к суспензионным культурам вызван тем, что при таком режиме культивирования, как правило, происходит интенсификация ростовых процессов, а в ряде случаев увеличивается биосинтетический потенциал культур. Суспензионные культуры сохраняют ряд свойств, характерных для исходного организма. Одним из таких свойств является способность к синтезу вторичных метаболитов [6, 7].Поскольку суспензионная культура клеток этого вида получена впервые, начальным этапом работы была оптимизация условий выращивания, изучение её цитологических и физиологических характеристик, в частности размера клеток, агрегированности, скорости роста суспензии, оптимального времени субкультивирования. По мере увеличения количества пассажей улучшались ростовые характеристики суспензионной культуры, сокращалось время максимального накопления массы клеток, увеличивалась концентрация и повышалась жизнеспособность культуры (табл. 1).Клеточная культура княжика сибирского способна как в каллусе, так и суспензии синтезировать тритерпеновые гликозиды и флавоноиды в условиях in vitro. В каллусной культуре клеток обнаружено содержание тритерпеновых сапонинов (1,19±0,02 г на 100 г сухой массы; для сравнения: в надземной части дикорастущего интактного растения - 1,00±0,01 г).Количество флавоноидов дикорастущего княжика сибирского: в листьях -6,09; в стеблях - 1,64%; в корнях - 0,83%; в надземной части растения в период цветения и плодоношения - 0,26% [8]. Максимальное содержание фла-воноидов (5,15%) в каллусной культуре со 2-го по 6-е субкультивирование сопоставимо с их количеством в листьях интактного растения (6,09%), что позволяет говорить о сохранении способности к накоплению данных соединений в культуре in vitro.Проведены исследования по влиянию ЖК на рост клеток в условиях твёрдой и жидкой питательных сред. Установлено, что ее концентрация 10-9 М приводит к снижению ростовых показателей каллусной культуры (табл. 2). Начиная с 17-х суток проявлялся ингибирующий эффект во всех диапазонах концентраций, что приводило к снижению прироста биомассы каллуса в конце субкультивирования (рис. 1). Жасмоновая кислота (при концентрации 10-6 и 10-9 М) оказывала ингибирующий эффект на клеточную суспензию 5-го и 6-го субкультивирований княжика сибирского (табл. 3).2Ооgю3 огЬгЬ•·контроль•·ЖК 10-7M•ЖК 10-8M•ЖК 10-9M□□81727Возраст культуры, сутРис. 1. Динамика роста клеточной культуры Atragene speciosa Weinm. 70-го субкультивирования с жасмоновой кислотой. * Различия достоверны с контролем при р < 0,05Т а б л и ц а 3Ростовые характеристики суспензионной культуры Atragene speciosa Weinm. на среде с жасмоновой кислотой (среднее значение ± m)В последние годы внимание исследователей привлекает такой регулятор роста, как эпибрассинолид (ЭБ) - класс фитогормонов с широким спектром биологической активности [9]. Существует сравнительно немного данных по исследованию действия ЭБ на культуры тканей растений, причем эффекты, как правило, противоречивы [10-12]. В экспериментах на культуре A. speci-osa было исследовано действие ЭБ в широком диапазоне концентраций. Только в концентрации 10-9 М ЭБ существенно влиял на рост каллуса и суспензионной культуры (табл. 4, 5). Добавление в среду ЖК и ЭБ в концентрации 10-8 М также стимулировало образование высокополярных тритерпеновых сапонинов. В суспензионной культуре княжика сибирского десятого субкультивирования обнаружено восемь высокополярных сапонинов.Т а б л и ц а 4Ростовые характеристики каллусной культуры Atragene speciosa Weinm. 5-го субкультивирования на среде с 24-эпибрассинолидом (среднее значение ± m)Параметры ростаВарианты выращиванияв колбахв пробиркахКонтроль I ЭБ, 10-9 MКонтроль I ЭБ, 10-9 MИндекс роста Сухая масса, мг2,44±0,023,67±0,213,65±0,032,65±0,37 4,76±0,075,31±0,23 | 3,76±0,21 | 7,53±0,24* Различия достоверны с контролем при р < 0,05.Т а б л и ц а 5Ростовые характеристики суспензионной культуры Atragene speciosa Weinm. на среде с 24-эпибрассинолидом (среднее значение ± m)Концентрация10-9ЭБ, М1,58±0,072,04±0,03 5,22±0,052,56±0,12* 2,44±0,09* 5,84±0,13*6,17±0,11*1,57±0,05 1,63±0,02* 3,87±0,11* 4,35±0,09*,,. 5,71±0,02 .10-6

Ключевые слова

Авторы

ФИООрганизацияДополнительноE-mail
Карначук Раиса Александровна Биологический институт Томского государственного университета доктор биологических наук, профессор, зав. кафедрой физиологии растений и биотехнологии karnach@mail.tsu.ru
Дорофеев Вячеслав Юрьевич Биологический институт Томского государственного университета кандидат биологических наук, старший научный сотрудник кафедры физиологии растений и биотехнологии karnach@mail.tsu.ru
Гвоздева Елена Станиславовна Биологический институт Томского государственного университета кандидат биологических наук, доцент кафедры физиологии растений и биотехнологии karnach@mail.tsu.ru
Головацкая Ирина Феоктистовна Биологический институт Томского государственного университета кандидат биологических наук, доцент кафедры физиологии растений и биотехнологии karnach@mail.tsu.ru
Чурин Алексей Александрович ГУ НИИ фармакологии ТНЦ СО РАМН доктор биологических наук, профессор, руководитель отделом лекарственной токсикологии karnach@mail.tsu.ru
Суслов Николай Иннокентьевич ГУ НИИ фармакологии ТНЦ СО РАМН доктор биологических наук, профессор, руководитель лаборатории лекарственной токсикологии karnach@mail.tsu.ru
Медведева Юлия Валерьевна Биологический институт Томского государственного университета старший лаборант кафедры физиологии растений и биотехнологии karnach@mail.tsu.ru
Всего: 7

Ссылки

Ларионов Г.И. Влияние препарата «Силк» на урожайность пшеницы и ячменя // Сельскохозяйственные вести. 2002. № 1. С. 55-59.
Roddick I.G., Rintrberg A.L., Ikekawa N. Developmental Effects of 24-Epibrassinolide in Excised Roots of Tomato Grown in vitro // Physiol. Plant. 1993. Vol. 87. P. 453-458.
Комисарова И.Д., Грехова И.В. Применение гуминового препарата «Росток» // Материалы конференции «Высокие технологии добычи, глубокой переработки и использования озерно-болотных отложений» (12-15 марта 2003 г.). 2003. С. 131-135.
Verpoorte R., Cosmo F. Di, Misava M. Plant Cell Culture Secondary Metabolism / Eds. Boca Raton. New York; London; Tokio: The CRS Press, 1996. Chapter 9. 660 p.
Khripach V.A., Zhabiunskii V.N. Groot Ae de Brassinosteroids: a new class of Plant Hormones. San Diego: Academic Press, 1999. 456 p.
Ikekawa N., Zhao Y.I. Application of 24-Epibrassinolide in Agriculture // J. Am. Chem. Soc. Meeting Abstracts. 1991. Vol. 474. P. 292.
Svatos A., Macek T. The rate production in suspension cultured cells of the fern Pteridium aquilinum // Phytochem. 1994. Vol. 35, № 3. P. 651-564.
Шилова И.В., Краснов Е.А., Суслов Н.И. Химико-фармакологическое изучение активной фракции Atragene speciosa Weinm. // Бюллетень СО РАМН. Новосибирск. 2001. № 3 (101). С. 44-49.
Simmonds D., Setterfield G., Brown D.L. Organization of microtubules in dividing and elongating cells of Vicia hajastana Grossh. in suspension culture // Eur. J. Cell Biol. 1983. Vol. 32, № 1. P. 54-66.
Мокроносов А.Т. Березенкова Р.А. Методика количественной оценки структуры и функциональной активности фотосинтезирующих тканей и органов // Практикум по прикладной ботанике, генетике и селекции. 1978. Т. 61, вып. 3. С. 119-133.
Головацкая И.Ф. Карначук Р.А. Регуляторная роль света в процессах фотосинтеза и роста лекарственных растений // Теоретические и практические аспекты изучения лекарственных растений. Томск: Сибирский госмедуниверситет, 1996. С. 49-51.
Паушева З.П. Практикум по цитологии растений. М.: Агропромиздат, 1988. 271 с.
Parthier B. Jasmonates, new regulators of plant growth and development: many facts and few hypotheses on their actions // Bot. Acta. 1991. Vol. 104. P. 446-454.
Debeljak N., Regvar M., Dixon K.W., Sivasithamparam K. Induction of tuberisation in vitro with jasmonic acid and sucrose in an Australian terrestrial orchid, Pterostylis sanguinea // Plant Growth Regulation 36. 2002. Р. 253-260.
 Влияние физиологически активныхсоединений на рост и уровень тритерпеновых сапонинов и флавоноидовклеточной культуры <i>Atragene speciosa </i>Weinm             | Вестник Томского государственного университета. Биология. 2008. № 3 (4).

Влияние физиологически активныхсоединений на рост и уровень тритерпеновых сапонинов и флавоноидовклеточной культуры Atragene speciosa Weinm | Вестник Томского государственного университета. Биология. 2008. № 3 (4).

Полнотекстовая версия