Улучшенная процедура визуального обнаружения тетрациклиновой метки при массовом мечении грызунов | Вестн. Том. гос. ун-та. Биология. 2017. № 39. DOI: 10.17223/19988591/39/8

Улучшенная процедура визуального обнаружения тетрациклиновой метки при массовом мечении грызунов

На основе анализа обширного краниального материала показано, что существующие методы визуальной диагностики тетрациклиновой метки у грызунов недостаточно надежны. Для повышения вероятности выявления меченых животных характерную флуоресценцию под ультрафиолетом необходимо искать в аншлифах как верхнего резца, так и нижней челюсти. Улучшенная методика дает прирост эффективности от 37 до 55%. Обнаружены различия в проявлении тетрациклиновой метки у полевок по сравнению с мышами. Установлено, что со временем образцы от любых вываренных и очищенных черепов становятся значительно светлее в ультрафиолете, что осложняет диагностику. Интенсивность флуоресценции метки в резцах также постепенно снижается. Определен критический срок хранения образцов - три года, после которого выявление метки затрудняется. Обнаружено, что обработка пероксидом водорода, которую часто применяют при очистке черепов грызунов, ухудшает видимость тетрациклиновой метки.

Improved visual detection of tetracycline label for group rodent marking.pdf Введение Методы массового самомечения животных, появившись несколько десятилетий назад, применялись главным образом для решения практических задач - оценки полноты потребления приманки с вакцинами или ядами [13] или разработки способов борьбы с вредителями [4]. Лишь в единичных случаях этот подход использовали в теоретических исследованиях [5, 6]. Возникновение и широкое признание концепции метапопуляций привело к значительному росту интереса исследователей к изучению миграционной активности животных, поскольку именно этот процесс связывает отдельные локальные популяции в структуры более высокого порядка [7]. Использование простых и дешевых способов массового мечения позволяет проводить эксперименты в масштабах целых ландшафтов [8-11], что часто совершенно необходимо в исследованиях процессов расселения или степени изоляции группировок особей. В связи с этим стали появляться работы, направленные на совершенствование существующих методик [12-15]. Применение тетрациклина в качестве биомаркера можно отнести к числу наиболее распространенных методов массового мечения. Животное, съевшее приманку, содержащую один из антибиотиков тетрациклинового ряда, получает метку в виде желтой флуоресценции в костях и зубах, наблюдаемую под действием ультрафиолета [16]. Явление вызвано тем, что тетрациклин и его дериваты образуют хелатные комплексы с ионами кальция в момент его депонирования в костных структурах [17]. Поэтому флуоресценция обнаруживается на тех участках, где происходил рост в тот период, когда животное съело приманку. Метод применяется почти исключительно на млекопитающих и особенно часто на грызунах. В последнем случае метку можно обнаружить визуально в растущих частях костей [18, 19] или в резцах [20, 21], которые у этой группы животных интенсивно растут всю жизнь. Существует также способ выявления тетрациклинов с помощью хроматографии [22], но он не получил широкого распространения, так как оказался слишком сложным и дорогим. К тому же эта методика подразумевает уничтожение образцов, что не всегда приемлемо. Поэтому простой визуальный поиск маркера по-прежнему остается основным методом, особенно удобным при работе с массовым материалом. При выявлении меченых грызунов присутствие тетрациклина чаще всего определяют или в кости нижней челюсти [1, 23, 24], или в верхнем резце [9-11, 21, 25]. Прямое сравнение этих методик ранее не проводилось. Цель данного исследования заключалась в поиске наиболее эффективной процедуры визуального обнаружения тетрациклиновой метки при массовом мечении грызунов с учетом возможных погрешностей, связанных со спецификой полевой работы и обработки краниального материала. Материалы и методики исследования Сравнение эффективности поиска метки в нижней челюсти или в верхнем резце грызунов выполнено на зверьках различных видов, помеченных приманкой с гидрохлоридом тетрациклина и пойманных летом 2016 г. в лесных массивах на территории г. Екатеринбурга. Отлов мелких млекопитающих проводили стандартным зоологическим методом с соблюдением общепринятых этических норм по отношению к животным. Мечение проводилось неоднократно, поэтому приманка была доступна грызунам в течение трех недель. В ходе пробоподготовки после выварки и очистки черепов делали аншлифы изолированного верхнего резца и одной из половин нижней челюсти вместе с резцом. Выявление тетрациклиновой метки проводили в темной комнате с использованием микроскопа МБС-1 (ЛОМО) и УФ осветителя с фильтром УФС-6. Все образцы, в которых обнаружены признаки метки, фотографировали в одном кадре с контрольными для подтверждения. Всего обработано 1 133 черепа. Проанализировано влияние на выявляемость тетрациклиновой метки двух распространенных практик, применяемых при работе с краниальным материалом, - музейного хранения и обработки черепов пероксидом водорода. Оценку воздействия фактора времени (музейного хранения) на общий вид в ультрафиолете аншлифов без метки осуществили на основе нашего материала, собранного в Екатеринбурге в 2011-2016 гг., а также в Ильменском заповеднике в 1978 и 2014 гг. Черепа старше 2013 г. хранились в целом виде. Аншлифы от них сделаны специально для данного исследования в начале 2017 г. Для проведения корректных сравнений случайно отобранные пары образцов разного срока хранения размещали в пределах поля зрения микроскопа и фотографировали одним кадром. Дальнейший анализ проводился по фотографиям. Для изучения изменений, происходящих с тетрациклиновой меткой с течением времени, использован дополнительный материал, полученный в результате однократного мечения в Екатеринбурге в 2013 г. В этом случае приманка была доступна зверькам не более недели. Оценку проводили, сравнивая фотографии образцов, сделанные в одинаковых условиях в 2013 и 2017 гг. При этом в обоих случаях использовали УФ осветитель ОЛД-41 (СПО Светотехника). Для изучения влияния обработки черепов пероксидом водорода на выяв-ляемость тетрациклиновой метки делались фотографии одних и тех же образцов (4 шт.) до и после соответствующей процедуры. Таблетки гидроперита, истолченные в порошок, заливали 50 мл кипятка, после чего помещали в раствор один верхний резец или целый череп на 30 мин. Перед фотографированием образцы просушивали при комнатной температуре не менее суток. На всех этапах исследования использовали фотоаппарат Canon Power-Shot SX220HS (Canon Inc., Япония). Полученные фотографии не подвергались никаким видам цветовой коррекции. Статистическое сравнение пропорций проводили с помощью точного критерия Фишера (двусторонний) в программном пакете StatSoft STATISTICA 6.0. Краниальный материал находится на хранении Музея ИЭРиЖ УрО РАН (г. Екатеринбург). Результаты исследования Сравнение двух способов поиска метки проведено на зверьках, помеченных в естественных условиях в рамках работы по изучению миграционной активности грызунов. Поэтому обстоятельства детекции метки в нашем методическом исследовании полностью аналогичны тем, с которыми сталкиваются зоологи при практическом применении тетрациклиновой методики. Всего выявлено 223 меченых животных, среди которых отмечены представители всех видов несинантропных грызунов, присутствовавших в выборке 2016 г. из Екатеринбурга: Sylvaemus uralensis (Pallas, 1811), Apodemus agrarius (Pallas, 1771), Myodes glareolus (Schreber, 1780), Myodes rutilus (Pallas, 1779), Microtus arvalis (Pallas, 1778), Microtus agrestis (Linnaeus, 1761), Microtus oeconomus (Pallas, 1776), Sicista betulina (Pallas, 1779). В большинстве случаев тетрациклиновая метка обнаружена как в верхнем, так и в нижнем резце (n = 134). У некоторых особей она найдена только в нижнем (n = 82) или только в верхнем резце (n = 5). В таких случаях метка была неяркой. Метка на кости нижней челюсти выявлена у 100 зверьков. У двух особей (S. uralensis и A. agrarius) яркая флуоресценция наблюдалась только в кости нижней челюсти при отсутствии метки в резцах (рис. 1). Рис. 1. Проявление тетрациклиновой метки (желтый или желто-зеленый цвет): A - только в нижнем резце Myodes glareolus; B - только в верхнем резце Sylvaemus uralensis; C - только в костяхApodemus agrarius. Фото О.В. Толкачёва и О.Р. Гизуллиной [Fig. 1. View of the tetracycline mark (yellow or yellow-green color): A - In the lower incisor Myodes glareolus; B - In the upper incisor Sylvaemus uralensis; C - Only in bones of Apodemus agrarius. Photo by OV Tolkachev and OR Gizullina] Выявлены некоторые особенности расположения метки в зубной ткани зверьков разных таксонов. Обнаружено, что в верхних резцах полевок флуоресценция проявляется в виде клина, сильно вытянутого в направлении роста зуба и обычно доходящего до окклюзионной поверхности в виде тонкой линии, тогда как у мышей свечение охватывает почти всю ширину шлифа (рис. 2). По нашим наблюдениям, интенсивность флуоресценции в зубах мышей обычно выше, чем у полевок. Случаи, когда метка проявлялась только в нижнем резце, достоверно чаще встречаются у полевок по сравнению с мышами (50 и 27% от меченых полевок и мышей соответственно; точный критерий Фишера, p < 0,001). При сравнении аншлифов верхних резцов немеченых животных, отловленных в разные годы (1978, 2011-2016), обнаружено, что все образцы, находящиеся на хранении больше трех лет, значительно светлее более свежих (рис. 3). Эффект проявляется вне зависимости от вида грызуна. Для дополнительной проверки реальности наблюдаемого явления над одним из авторов поставили «слепой эксперимент», в ходе которого испытуемый успешно разделил смешанную выборку образцов 1978 и 2016 гг. с зашифрованными номерами на две соответствующие группы. Myodes glareolus Myoaes giareoius Myoaes giareoius Myoaes giareoius Sylvaemus uralensis Sylvaemus uralensis Sylvaemus uralensis Рис. 2. Типичное проявление тетрациклиновой метки в аншлифах верхних резцов рыжей полевки (Myodes glareolus Schreber, 1780) и малой лесной мыши (Sylvaemus uralensis Pallas, 1811). Образцы получены от животных, отловленных на площадке мечения в рамках одного эксперимента. Приманка с тетрациклином экспонировалась в течение трех недель. Фото О.В. Толкачёва и О.Р. Гизуллиной [Fig. 2. Typical manifestation of the tetracycline mark in slices of the upper incisors of bank vole (Myodes glareolus Schreber, 1780) and pigmy wood mouse (Sylvaemus uralensis Pallas, 1811). Specimens were obtained from animals caught at a marking plot within the same experiment. The bait with tetracycline was exposed for three weeks. Photo by OV Tolkachev and OR Gizullina] fS УЧ rs yv rs Sylvarmus uralensis Рис. 3. Эффект «осветления» верхних резцов у немеченых животных с течением времени при сравнении случайных выборок образцов 2012 и 2016 гг. Фото О.В. Толкачёва [Fig. 3. «Lightening» effect appearing in the upper incisors of unmarked animals over time when comparing random samples from 2012 and 2016. Photo by OV Tolkachev] Сравнительный анализ состояния верхних резцов с тетрациклиновыми метками, выполненный по фотографиям одних и тех же образцов, сделанным в 2013 и 2017 гг., показал, что площадь наблюдаемой флуоресценции и её интенсивность уменьшаются со временем независимо от видовой принадлежности грызуна. Обнаружено, что обработка образцов пероксидом водорода приводит к аналогичному эффекту (рис. 4). Если резцы не извлечены из черепа, то пероксид действует только на те их части, которые выступают из альвеол. Рис. 4. Деградация тетрациклиновой метки в аншлифах верхних резцов со временем и после обработки пероксидом водорода. A - вверху один и тот же образец с меткой, сфотографированный в идентичных условиях в 2014 и 2017 гг.; ниже - два контрольных образца за соответствующие годы. B - вверху резец с меткой до и после обработки пероксидом водорода; ниже - один и тот же контрольный образец. Фото О.В. Толкачёва [Fig. 4. Degradation of the tetracycline mark in slices of the upper incisors over time and after treatment with peroxide hydrogen. (A) At the top is the same marked specimen photographed in identical conditions in 2014 and 2017. Below are two control samples for the respective years. (B) At the top is the incisor with the mark before and after treatment with hydrogen peroxide. Below is the same control sample. Photo by OV Tolkachev] Обсуждение результатов исследования Основной целью нашего исследования являлось сравнение эффективности двух методик визуального поиска тетрациклиновой метки у грызунов - в нижней челюсти или в верхнем резце. Существование этих двух подходов связано с историей развития метода в целом. В 1967 г. С. Линхарт и Дж. Кеннели [26] впервые предложили применять тетрациклин в экологических исследованиях. В своей работе они использовали койотов, у которых для анализа брали кости ног, грудину, ребро и половину нижней челюсти. Наиболее заметная флуоресценция наблюдалась в нижней челюсти. Позднее Дж. Криер [23] провел сходное исследование на грызунах. При этом он проводил поиск метки только в нижней челюсти, опираясь на работу предыдущих авторов, и не делал шлифы. Все последующие англоязычные исследователи использовали эту методику. В России применение тетрациклинов для мечения грызунов началось со статьи Г.А. Клевезаль и М.В. Мины [21], в которой авторы определяли метку только в верхнем резце, поскольку образцы получали из неочищенных черепов в полевых условиях, а извлекать нижнюю челюсть в таком случае намного сложнее (Г.А. Клевезаль, личное сообщение). Важным нововведением этих авторов стало приготовление ан-шлифов резцов, что повысило эффективность детекции метки. В большинстве русскоязычных работ применяется именно этот подход [9-11, 25, 27]. В некоторых случаях дополнительно исследовали различные кости черепа и посткраниального скелета [18, 19]. Мы считаем, что при работе с массовым материалом, обычно получаемым при массовом мечении грызунов, целесообразно работать только с черепом животных, поскольку этот подход лучше всего согласуется с общепринятыми зоологическими методиками, не требуя дополнительных манипуляций с отловленными зверьками. 2014 Хранение 2017 Storing ? В ходе исследования мы установили, что у некоторых особей флуоресценция проявляется только в нижнем или только в верхнем резце. Тетра-циклиновая метка в нижней челюсти грызунов (резец + кость) проявляется несколько чаще, чем в верхнем резце (218 vs 140 случаев). Соответственно, поиск метки в нижней челюсти на 35,8% эффективнее. Флуоресценцию в костях (100 случаев) мы наблюдали реже, чем в зубах. Кроме того, по нашим наблюдениям, интенсивность флуоресценции на поверхности костей обычно меньше, чем в резцах. В двух образцах метка обнаружена только в костях, но не в зубах. Поскольку оба зверька отловлены спустя 12 недель после мечения, очевидно, что метка в их резцах успела исчезнуть из-за стачивания зубов. Все остальные меченые зверьки отлавливались через 3-6 недель после раскладки приманки с тетрациклином. Два аналогичных случая описаны ранее Е.Ф. Малафеевой [25] на серых полевках. Очевидно, что поиск метки только на поверхности костей черепа был бы в нашем случае крайне неэффективным, вопреки рекомендациям Дж. Криера [23]. Более интенсивное проявление флуоресценции в резцах по сравнению с костями может объясняться тем, что первые, в отличие от последних, у грызунов растут постоянно, а тетрациклин связывается только со свободными ионами кальция, которые в достаточном количестве присутствуют в местах пролиферации минерализованных тканей. Более частое проявление метки в нижних резцах по сравнению с верхними, вероятно, связано с тем, что первые у грызунов растут быстрее [28]. Таким образом, для наиболее полного выявления меченых зверьков целесообразно просматривать аншлифы как верхнего резца, так и нижней челюсти. Предлагаемый комбинированный подход эффективнее поиска метки только в кости нижней челюсти на 55,2%, а по сравнению с просмотром одного верхнего резца - на 37,2%. Обнаруженные различия в паттернах проявления метки в верхних резцах мышей и полевок могут быть связаны как с особенностями строения и роста резцов в семействах Muridae и Cricetidae, так и с различиями в полученной дозе маркера из-за разных кормовых предпочтений и, соответственно, разного сродства к нашей приманке. При сравнении общего вида резцов разных лет сбора выяснилось, что образцы, находящиеся на хранении три года и более, выглядят под ультрафиолетом заметно светлее, чем свежие, что осложняет диагностику тетра-циклиновой метки из-за снижения контрастности по сравнению с фоном. Параллельно происходит деградация самой метки, что заметно по снижению яркости, площади и формы флуоресцирующих участков. Вероятно, наблюдаемый эффект вызван постепенным разрушением остатков органики в зубах (включая хелатные комплексы). Тем же может объясняться и деградация метки под действием перекиси водорода, которая часто применяется для финальной очистки черепов или при работе со старыми, плохо почищенными образцами. Данное предположение косвенно подтверждается тем, что интенсивность флуоресценции тетрациклина в костях сильно снижается после воздействия видимого света, вероятно, тоже за счет разрушения хе-латных комплексов [29, цит. по 26]. В связи с этим необходимо отметить, что краниальный материал, использованный в нашем исследовании, хранился в закрытых ящиках, главным образом в подвальном хранилище Музея ИЭ-РиЖ УрО РАН. Выводы Итогом исследования стало обнаружение нескольких факторов, способных существенно повлиять на эффективность визуальной детекции тетра-циклиновой метки при массовом мечении грызунов. Сделанные выводы можно представить в виде практических рекомендаций: 1. При работе с краниальным материалом метку следует искать в аншли-фах как верхнего резца, так и нижней челюсти. 2. Детекцию нужно проводить в первые три года после очистки черепов. 3. Выборки черепов, в которых планируется искать тетрациклиновую метку, нельзя обрабатывать пероксидом водорода. Авторы признательны канд. биол. наук, с.н.с. лаборатории популяционнойрадиобиологии Е.Б. Григоркиной и канд. биол. наук, н.с. лаборатории палеоэкологии Ю.Э. Кро-пачевой (Институт экологии растений и животных УрО РАН, г. Екатеринбург) за помощь, оказанную при подготовке рукописи.

Ключевые слова

Myodes rutilus, Microtus oeconomus, Myodes glareolus, Microtus arvalis, Microtus agrestis, Apodemus agrarius, Sicista betulina, Sylvaemus uralensis

Авторы

ФИООрганизацияДополнительноE-mail
Оленев Григорий ВалентиновичИнститут экологии растений и животных УрО РАНд-р биол. наук, зав. лабораторией популяционной экологии и моделированияolenev@ipae.uran.ru
Гизуллина Олеся РафаиловнаИнститут экологии растений и животных УрО РАНинженер-исследователь лаборатории популяционной экологии и моделированияgizullina_or@ipae.uran.ru
Толкачёв Олег ВладимировичИнститут экологии растений и животных УрО РАНканд. биол. наук, н.с. лаборатории функциональной экологии наземных животныхolt@mail.ru
Всего: 3

Ссылки

Buyske D.A., Eisner H.J., Kelly R.G. Concentration and persistence of tetracycline and chlortetracycline in bone // J. Pharm. and Exptl. Therap. 1960. Vol. 130, № 2. PP. 150-156.
Гладкина Т.С., Кожевников В.С. Тетрациклин в качестве маркера для изучения расселения обыкновенной полевки // Экология. 1986. № 4. С. 84-86.
Зубцова Г.Е. Скорость роста резцов некоторых грызунов // Грызуны : материалы VI Всесоюзного совещания. Л. : Наука. 1983. С. 152-154.
Linhart S.B., Kennelly J.J. Fluorescent bone labeling of coyotes with demethylchlortetracycline // The Journal of Wildlife Management. 1967. Vol. 31, № 2. PP. 317-321. doi: 10.2307/3798322
Малафеева Е.Ф. Об использовании тетрациклина в экологических исследованиях // Экология. 1984. № 3. С. 79-81.
Lavoie G.K., Atwell G.C., Swink F.N., Sumangil J.P., Libay J. Movement of the ricefield rat, Rattus rattus mindanensis, in response to flooding and plowing as shown by fluorescent bone labeling // Philippine agriculturist. 1971. Vol. 54. PP. 325-330.
Crier J.K. Tetracyclines as a fluorescent marker in bones and teeth of rodents // The Journal of Wildlife Management. 1970. Vol. 34, № 4. PP. 829-834. doi: 10.2307/3799151
Рыльникoв В.А., Николаев Г.М., Ушакова Т.А. Метод мечения костей серых крыс путем комбинирования четырех антибиотиков группы тетрациклина и его применение // Зоологический журнал. 1981. Т. 60, № 9. С. 1411-1414.
Клевезаль Г.А., Мина М.В. Методика группового мечения грызунов с помощью тетрациклина и возможности ее использования в экологических исследованиях // Зоологический журнал. 1980. Т. 59, № 6. С. 936-941.
Milch R.A., Rall D.P., Tobie J.E. Fluorescence of tetracycline antibiotics in bone // The Journal of bone and joint surgery. American volume. 1958. Vol. 40-A, № 4. PP. 897-910. PMID: 13549526
Лобков В.А. Опыт группового мечения тетрациклином молодых крапчатых сусликов (Citellus suslicus) для изучения их расселения // Зоологический журнал. 1984. Т. 63, № 2. С. 309-311.
Рыльникoв В.А., Карасева Е.В., Дубинина Н.В. Изучение подвижности серых крыс на рисовых полях Краснодарского края с помощью мечения костей тетрациклином // Грызуны : материалы V всесоюз. совещ. Саратов, 1980. С. 264-265.
Frost H.M., Villanueva A.R., Roth H., Stanisavljevic S. Tetracycline bone labeling // The Journal of New Drugs. 1961. Vol. 1, is. 5. PP. 195-244. doi: 10.1177/009127006100100503
Reidy M.M., Campbell T.A., Hewitt D.G. A mark-recapture technique for monitoring feral swine populations // Rangeland Ecology & Management. 2011. Vol. 64, № 3. PP. 316-318. doi: 10.2111/REM-D-10-00158.1
Milch R.A., Rall D.P., Tobie J.E. Bone Localization of the Tetracyclines // Journal of the National Cancer Institute. 1957. Vol. 19, № 1. PP. 87-93.
Smyser T.J., Beasley J.C., Olson Z.H., Rhodes O.E. Jr. Use of Rhodamine B to reveal patterns of interspecific competition and bait acceptance in raccoons // Journal of Wildlife Management. 2010. Vol. 74, № 6. PP. 1405-1416. doi: 10.2193/2009-299
Belant J.L., Etter D.R., Mayhew S.L., Visser L.G., Friedrich P.D. Improving large scale mark-recapture estimates for American black bear populations // Ursus. 2011. Vol. 22, № 1. PP. 9-23. URL: http://www.jstor.org/stable/41304051
Fisher P. Review of Using Rhodamine B as a Marker for Wildlife Studies // Wildlife Society Bulletin. 1999. Vol. 27, № 2. PP. 318-329. URL: http://www.jstor.org/stable/3783897
Толкачев О.В. Расс еление малой лесной мыши (Sylvaemus uralensis Pallas, 1811) и рыжей полевки (Clethrionomys glareolus Schreber, 1780) в условиях фрагментированного ландшафта // Сибирский экологический журнал. 2016. № 1. С. 137-147. doi: 10.15372/ SEJ20160114
Толкачев О.В. Исследование миграций мышевидных грызунов в городской среде // Экология. 2016. № 4. С. 307-312. doi: 10.7868/S0367059716040144
Григоркина Е.Б., Оленев Г.В. Миграции грызунов в зоне влияния Восточно-Уральского радиоактивного следа (радиобиологический аспект) // Радиационная биология. Радиоэкология. 2013. Т 53, № 1. С. 76-83.
Peacock E., Titus K., Garshelis D.L., Peacock M.M., Kuc M. Mark-recapture using tetracycline and genetics reveal record-high bear density // The Journal of Wildlife Management. 2011. Vol. 75, № 6. PP. 1513-1520. doi: 10.1002/jwmg.171
Hanski I., Gilpin M. Metapopulation dynamics: brief history and conceptual domain // Biological Journal of the Linnean Society. 1991. Vol. 42. PP. 3-16. doi: 10.1111/j.1095-8312.1991.tb00548.x
Szacki J., Liro A. Movements of small mammals in the heterogeneous landscape // Landscape ecology. 1991. Vol. 5, № 4. PP. 219-224. doi: 10.1007/BF00141436
Большаков В.Н., Баженов А.В. Радионуклидные методы мечения в популяционной экологии млекопитающих. М. : Наука, 1988. 158 с.
Рыльникoв В.А. Зональные oсобенности сезонных миграций серых крыс (Rattus norvegicus Berk.) России в аспекте управления ее численностью // Бюллетень Московского общества испытателей природы. Отдел биологический. 2007. Т. 112, № 3. С. 13-19.
Slate D., Algeo T.P., Nelson K.M., Chipman R.B., Donovan D., Blanton J.D., Niezgoda M., Rupprecht C.E. Oral Rabies Vaccination in North America: Opportunities, Complexities, and Challenges // PLoS Neglected Trop Diseases. 2009. Vol. 3, № 12. PP. 1-9. doi: 10.1371/ journal.pntd.0000549
Tripp D.W., Rocke T.E., Streich S.P., Brown N.L., Fernandez J. R.-R., Miller M.W. Season and application rates affect vaccine bait consumption by prairie dogs in Colorado and Utah, USA // Journal of Wildlife Diseases. 2014. Vol. 50, № 2. PP. 224-234. doi: 10.7589/2013-04-100
Lindsey G.D., Nass R.D., Hood G.A. An Evaluation of Bait Stations for Controlling Rats in Sugarcane // The Journal of Wildlife Management. 1971. Vol. 35, № 3. PP. 440-444. doi: 10.2307/3799695
 Улучшенная процедура визуального обнаружения тетрациклиновой метки при массовом мечении грызунов | Вестн. Том. гос. ун-та. Биология. 2017. №  39. DOI:  10.17223/19988591/39/8

Улучшенная процедура визуального обнаружения тетрациклиновой метки при массовом мечении грызунов | Вестн. Том. гос. ун-та. Биология. 2017. № 39. DOI: 10.17223/19988591/39/8

Полнотекстовая версия