Сравнительная оценка влияния ресвератрола и карнитина на полнотранскриптомный профиль ткани печени мышей с различной предрасположенностью к развитию алиментарного ожирения | Вестник Томского государственного университета. Биология. 2021. № 54. DOI: 10.17223/19988591/54/5

Сравнительная оценка влияния ресвератрола и карнитина на полнотранскриптомный профиль ткани печени мышей с различной предрасположенностью к развитию алиментарного ожирения

Проведено полнотранскриптомное профилирование ткани печени линейных и тетрагибридных мышей при потреблении биологически активных веществ ресвератрола и карнитина на фоне высокоуглеводного высокожирового рациона. Составлен список дифференциально экспрессирующихся генов, а также метаболических путей, затронутых при применённых диетических воздействиях. Обнаружены значительные различия в профиле дифференциальной экспрессии у мышей линии DBA/2J и тетрагибридов DBCB. Сделан вывод о необходимости учитывать генотип при доклинических исследованиях биологически активных веществ, применяемых при лечении ожирения и сопутствующих заболеваний.

Comparative evaluation of the effect of resveratrol and carnitine on the full transcriptomic profile of liver tissue in .pdf Сокращения [Abbreviations]: БАД - биологически активная добавка [BAFS -Biologically active food supplement]; БАВ - биологически активное вещество [BAS -Biologically active substance]; l-Кар - l-карнитин [l-Car - l-carnitine]; Рес - ресвератрол [Res - Resveratrol]; DBA/2J - мыши линии DBA/2J [Line of mice DBA/2J]; DBCB - мыши-тетрагибриды [Tetrahybrid mice]; ВУВЖР - высокоуглеводный, высокожировой рацион [HFCD - High-carbohydrate and high-fat diet]; ДЭ - дифференциальная экспрессия [DE - Differential expression]. Для цитирования: Трусов Н.В., Апрятин С.А., Тимонин А.Н., Шипелин В.А., Гмошинский И.В., Никитюк Д.Б. Сравнительная оценка влияния ресвератрола и карнитина на полнотранскриптомный профиль ткани печени мышей с различной предрасположенностью к развитию алиментарного ожирения // Вестник Томского государственного университета. Биология. 2021. № 54. С. 83-115. doi: 10.17223/19988591/54/5 Н.В. Трусов, С.А. Апрятин, А.Н. Тимонин и др. 84 Введение В лечении ожирения и родственных алиментарно-зависимых заболеваний (атеросклероза, сахарного диабета 2-го типа, метаболического синдрома, артериальной гипертонии и др.) наряду с использованием традиционных диет, основанных на редукции общей калорийности, ограничении простых углеводов, животных жиров и холестерина в качестве полезного дополнения рассматриваются специализированные продукты и биологически активные добавки (БАД) к пище, обогащенные минорными биологически активными веществами (БАВ). Имеющаяся у них способность при поступлении в организм в дозах, близких к их содержанию в естественном пищевом рационе, нормализовать нарушенные процессы липидного и углеводно-энергетического обмена, корректировать пищевое поведение, стимулировать физическую активность больных, регулировать состав кишечного микробиоценоза позволяет, по современным данным, значительно повысить эффективность диетотерапии и закрепить ее результаты [1-3]. В качестве основных групп БАВ, потенциальных модуляторов жирового и углеводно-энергетического обмена, рассматриваются полифенольные соединения (флавоноиды, ресве-ратрол и др.) [4, 5], фитостерины, аминокислоты [6], витаминоподобные вещества (l-карнитин, коэнзим Q10, липоевая кислота и др.) [7-9]. Персонифицированное назначение продуктов, обогащенных перечисленными БАВ, требует учета природы и механизмов их воздействия на обменные процессы с учетом генотипа больного, тяжести, стадии патологического процесса. Механистические представления о потенцирующем либо ингибирующем влиянии БАВ на отдельные звенья метаболизма и ферментные системы в настоящее время сменяются концепцией комплексного воздействия на одновременную экспрессию большого числа генов. Понимание этих процессов позволяет не только более адресно назначать диетотерапию больным, но и понимать причины неоднозначности результатов клинического применения ряда БАВ в диетическом и специализированном питании [10, 11], что вызывает сомнения в целесообразности их использования с позиций современной доказательной медицины. Одним из мощных методов изучения экспрессии генов является полно-транскриптомный анализ на микрочипе, впервые использованный для оценки влияния различных диетических факторов в 2000 г. [12]. Данный подход позволяет, с привлечением методов биоинформатики, не только одновременно получить данные о транскрипционной активности практически полного комплекса генов, представленных в ткани или клетке, но и сделать содержательные выводы об изменениях в метаболических путях, находящих отражение на фенотипическом уровне. Целью настоящего исследования явился анализ нутригеномных механизмов воздействия биологически активных веществ - l-карнитина (1-Кар) и ресвератрола (Рес) на организм мышей линии DBA/2J и тетрагибридов DBCB, отличающихся по генотипу и чувствительности к развитию индуци- Сравнительная оценка влияния ресвератрола и карнитина 85 рованного рационом ожирения, с использованием метода полнотранскриптомного профилирования ткани печени. Материалы и методики исследования Эксперимент проведен на самцах мышей (возрастом 8-10 недель) линии DBA/2J и гибридов 2-го поколения DBCB, полученных посредством скрещивания четырех линий мышей (DBA/2J, BALB/c, CBA/lac и C57Black/6J), поступивших из питомника «Столбовая» ФГБУН «Научный центр биомедицинских технологий ФМБА России» (Московская обл., Россия). Для получения F1 самки DBA/2J скрещены с самцами BALB/c (1-й гибрид F1), а самки CBA/lac с самцами C57Black/6J (2-й гибрид F1). Для получения тетрагибридов мыши из обоих гибридов первого поколения скрещены между собой. Работа с животными выполнена в соответствии с международными рекомендациями (Directive 2010/63/EU on the protection of animals used for scientific purposes adopted on September 22, 2010; Guide for the care and use of laboratory animals. Eighth Edition / Committee for the Update of the Guide for the Care and Use of Laboratory Animals; Institute for Laboratory Animal Research (ILAR); Division on Earth and Life Studies (DELS); National Research Council of the national academies. Washington: The National Academies Press. 2011). Дизайн эксперимента одобрен Комитетом по этике ФГБУН «ФИЦ питания и биотехнологии» (протокол № 4 от 20.04.2017 г.). Мыши (как линейные, так и тетрагибриды) в эксперименте разделены на 4 группы равной численностью по 8 особей. Средняя масса тела в сформированных группах изначально статистически значимо не различалась у животных каждого генотипа (р > 0,1 ; ANOVA). В течение 65 суток животные 1-х (контрольных) групп получали сбалансированный полусинтетический рацион по AIN93M с некоторыми модификациями [13] и очищенную обратным осмосом питьевую воду, животные 2-х групп -высокоуглеводный, высокожировой рацион c повышенным содержанием жира (30% по массе сухих веществ рациона) и с заменой питьевой воды на 20% раствор фруктозы (ВУВЖР), животные 3-х групп - такой же рацион с добавлением Рес (DSM, Голландия, торговая марка resVida®, 98% чистоты по данным высокоэффективной жидкостной хроматографии) в расчётной дозе 25 мг/кг массы тела (м.т.), 4-х групп - такой же рацион с добавлением l-Кар (WIRUD, Германия, 98% чистоты по данным высокоэффективной жидкостной хроматографии) в расчётной дозе 300 мг/кг массы тела (м.т.). Мышей содержали по 4 особи в клетке при температуре 21±1 оС и режиме освещения 12/12 ч. Количество съеденного корма и выпитой жидкости определяли ежедневно, массу тела - 1 раз в 3 суток с точностью ±0,1 г путем взвешивания на электронных весах, наблюдали за внешним видом, активностью, состоянием шерстяного покрова, особенностями поведения. Н.В. Трусов, С.А. Апрятин, А.Н. Тимонин и др. 86 Выведение животных из эксперимента осуществляли на 66-е сутки путем обескровливания из нижней полой вены под эфирной анестезией. Массу органов, забрюшинной и бурой подлопаточной жировой ткани определяли на лабораторных весах с точностью ±0,01 г. Кровь собирали в пробирки с антикоагулянтом 1,0% раствором гепарина в 0,15 М NaCl (1:10 по объему), плазму отделяли центрифугированием в течение 30 минут при 3 000 об/мин и проводили исследование биохимических показателей (содержание глюкозы, триглицеридов, холестерина и др.) на биохимическом анализаторе Konelab 20i (Thermo Clinical Labsystems Oy, Финляндия) по стандартным методикам. Печень отбирали в асептических условиях стерильными хирургическими инструментами, немедленно охлаждали до 0 °С и делили на две порции. Первый образец фиксировали в 10% нейтральном формалине для морфологического исследования, а второй охлаждали до -80 °С и хранили до проведения полнотранскриптомного анализа. Морфологическое исследование ткани печени проводили с использованием световой микроскопии после окрашивания парафиновых срезов тканей гематоксилин-эозином по ранее описанной методике [14]. Полнотранскриптомный анализ выполнен с помощью набора Gene Expression Hybridization Kit (Agilent Technologies, США). Методика выделения тотальной РНК и полнотранскриптомного профилирования ткани печени детально изложена в работе [15]. В работе использованы микрочипы SurePrint G3 Mouse GE 8x60K Microarray Kit (Agilent Technologies, США, каталожный номер G4852A). На 4 микрочипах 32 независимых образца РНК печени из всех 8 групп мышей (по 4 образца из группы). Сканирование проведено с помощью Sure Scan Microarray Scaner (Agilent Technologies, США). Дифференциальная экспрессия (ДЭ) генов выражена в виде логарифма по основанию 2 возрастания или убывания флуоресценции (log2FC) по сравнению с группами, рассматриваемыми в качестве контроля, по отдельности для мышей DBA/2J и DBCB в следующих сравнениях: 1) между животными, получавшими ВУВЖР, и животными контрольной группы; 2) между мышами, получавшими оба типа добавок (Рес и l-Кар), и мышами, получавшими ВУВЖР. После этого выявленные для всех этих сравнений профили ДЭ сравнены между мышами DBA/2J и DBCB с помощью теоретико-множественного анализа (метод диаграмм Венна). Данные сканирования чипов и расчета величин ДЭ в виде электронных таблиц экспортированы в среду «R» и проведён биоинформатический анализ с квантильной нормализацией и дальнейшим анализом ДЭ в пакете limma. Для выявления метаболических путей среди представленных в международной базе данных генов, метаболических путей и функций биологических систем Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes (KEGG) (https://www. genome.jp/kegg/) и их визуализации применены пакеты AnnotationDbi, org. Rn.eg.db, pathview, gage, gageData. Визуализация результатов на всех этапах с помощью стандартной графики «R» и дополнительные пакеты ggplot2, Сравнительная оценка влияния ресвератрола и карнитина 87 ggrepel и gplots. Статистическая значимость изменения экспрессии оценена путём анализа логарифмов интенсивности флуоресценции, нормализованных по внутреннему контролю (Spike-In) с использованием Т-теста с множественной коррекцией Benjamini-Hochberg [16]. Корреляционный анализ ДЭ генов выполнен с использованием z-трансформации Фишера полученных корреляций Пирсона, а также оценки линеаризованности кривой связи между анализируемыми генами при проверке нуль гипотезы r=0 для оценки ненулевой корреляции и r=1 для оценки хорошо линеаризованной кривой связи при уровне значимости 0,05. Поиск информации о биологических функциях генов осуществлен с использованием ресурса GeneMANIA (http:// genemania.org/), интегрированного с Национальным центром биотехнологической информации США NCBI (http://www.ncbi.nlm.nih.gov). Результаты исследования и обсуждение Интегральные, биохимические и морфологические показатели животных. Данные об изменениях в интегральных и биохимических показателях мышей под действием потребления ВУВЖР представлены в предыдущей работе [17]: для мышей DBCB, получавших ВУВЖР, характерно появление фенотипических признаков ожирения, проявлявшихся в увеличении запасов абдоминального белого жира, снижении отношения массы подлопаточного бурого жира к массе белого забрюшинного жира. У мышей DBA/2J, по данным изучения интегральных показателей, фенотип ожирения при потреблении ВУВЖР не развился. В отличие от мышей DBA/2J, мыши DBCB характеризовались гипергликемией, повышенным уровнем общего холестерина и холестерина ЛПВП, являющегося его основной транспортной формой у грызунов. При морфологическом исследовании печени обнаружено, что у мышей DBA/2J, получавших контрольный рацион, отмечена нормальная структура ткани печени (рис. 1, а), а у получавших ВУВЖР отмечалось слабо выраженное диффузное накопление жира в гепатоцитах без изменения общего строения ткани. Добавки l-Кар и Рес не оказали видимого влияния на распределение жира в печени у этих животных. У мышей DBCB уже при потреблении контрольного рациона отмечалось выраженное накопление жира в клетках (рис. 1, b), а при потреблении ВУВЖР наблюдалась жировая дистрофия ткани с образованием большого числа крупных липидных вакуолей (рис. 1, c). Этот результат качественно совпал с ранее полученными данными для этих тетрагибридных мышей, получавших высокосахарозный рацион [18]. Добавка l-Кар к ВУВЖР у мышей DBCB способствовала уменьшению размера и числа жировых вакуолей и их концентрированию в периваскулярной области (рис. 1, d), а применение добавки Рес сопровождалось их практически полным исчезновением с сохранением диффузного накопления жира в гепа-тоцитах, сходного с контролем (рис. 1, e). 88 Н.В. Трусов, С.А. Апрятин, А.Н. Тимонин и др. (a) (b) (c) (d) Рис. 1. Светооптические микрофотографии срезов печени мышей. Окраска гематоксилин-эозином, увеличение *200: a - мыши DBA/2J, контрольная группа; b - мыши DBCB, контрольная группа; c - мыши DBCB, ВУВЖР; d - мыши DBCB, ВУВЖР с добавкой l-Кар; e - DBCB, ВУВЖР с добавкой Рес [Fig. 1. Light-optical micrographs of the sections of the liver of mice. Hematoxylin-eosin staining, *200 magnification: a - DBA/2J mice, control group; b - DBCB mice, control group; c - DBCB mice, HFCD; d - DBCB mice, HFCD with the addition of l-Car; e - DBCB mice, HFCD with the addition of Res] Сравнительная оценка влияния ресвератрола и карнитина 89 Потребление добавки l-Кар вместе с ВУВЖР привело у мышей DBCB к статистически значимому снижению уровней триглицеридов плазмы крови, снижению активности в плазме аланиновой (АЛТ) и аспарагиновой (АСТ) трансаминаз без изменения их соотношения. Сходное действие на биохимические показатели у этих животных оказала и добавка Рес. Эффектов обеих добавок к ВУВЖР в отношении биохимических показателей у мышей DBA/2J не выявлено [18]. Полнотранскриптомное исследование генов печени. Представленные на ДНК-микрочипе нуклеотидные последовательности покрывают 39430 генов, в числе которых кодирующие последовательности генов, а также длинные межгенные некодирующие РНК (long intergenic noncoding RNAs, lincRNAs) генома Mus domesticus согласно [19]. ДЭ как минимум для одного из межгрупповых сравнений в размере |log2FC|>0,5 (в сторону как усиления, так и ослабления) и при уровне значимостиp-value < 0,05 выявлена для 415 транскриптов (1,1% от общего числа представленных на чипе). Из них для 100 генов (0,25%) ДЭ выявлена при двух, для 28 (0,07%) - при трех, для 3 (0,01%) - при 4 межгрупповых сравнениях. С использованием аннотированной международной базы данных GeneMANIA представлены сведения о 311 транскриптах, отождествляемых с белками или РНК с известной функцией. Перечни кратких международных наименований генов, ответивших на примененные диетические воздействия у мышей двух генотипов, и аннотируемых в используемой базе данных, приведены в табл. 1-3. Таблица 1 [Table 1] Список кратких международных обозначений генов1 с ДЭ в печени в ответ на потребление ВУВЖР (в сравнении с животными контрольной группы) [List of short international designations of genes with DE in the liver in response to the consumption of HFCD (in comparison with the animals of the control group)] Интервал ДЭ [DE interval] (log2FC) Только у мышей DBA/2J [DBA mice only] Только у мышей DBCB [DBCB mice only] У мышей обоих генотипов2 [Both mice genotypes] Положительная ДЭ [Positive DE] >1,0 Chacl Vps16, Ifi202b, Vnn1, Pcp4l1, Cox6b2, Lgals1 Mt1, Aatk 0,5-1,0 Fam25c, Pim3, Mvd, Maff, S100a9, Upp2, Mafb, Tef Hsd17b7, Etfbkmt, Slc5a6, Plekhfl, Ccnel, Cyp2d40, Herpudl, Klhl21, Csrnpl, Golph3l, Klf9, Hist1h2ao, Saa4 Sult2a7, Fam213b, Rs5-8s1, Acnat2, Gypc, Nat8, Gck, Itpa, Sipa1l2, Gpc1, Samd9l, Haus8, Doplb, Bmp7, N4bp2,Ifit3, Lrg1, Wnt5b, Slc22a7, Retsat, Acaa1b, Aspa, Qpct, Crot, Tmem98, Smim10l1, Paqr7, Rtn4rl1 Msmo1, Raet1e, NrldP, Pparg, Idil, Mvk 90 Н.В. Трусов, С.А. Апрятин, А.Н. Тимонин и др. Окончание табл. 1 [Table 1 (end)] Интервал ДЭ [DE interval] (log'FC) Только у мышей DBA/2J [DBA mice only] Только у мышей DBCB [DBCB mice only] У мышей обоих генотипов2 [Both mice genotypes] Отрицательная ДЭ [Negative DE] (-1,0)-(-0,5) Tubb5, Tmie, Gstm2, Dhx58, Oasl2, Prg4, Irf7, Cyp2c68, Tuba1c, Lrfn3, Sdf2l1, Chka,Dido1, Oaslf Gstm4, Ang, Cd52, Gsta2, F2r, Mgat2, Pltp, Neurl2, Apom, Rbm3, Ang3, Acly, Ccl5, Tfg, Nkd2, Ang4, Jun, G6pdx, Dntt, Sucnrl, Ang2, Cd74, Lrtm1, Klf10, Cdh1, Psen2, H2-Eb1, Pop4 Slc35g1, Dusp6, Cyp2c70, Isg153 1,0 G6pc3 Marco, Psen23, Igfbpl - 0,5-1,0 Etnppl, Tkfc4, Pklr4, Ppan, DidoP, Ddit4, Inhbe, Celsr13 Cyp2c233, NrldP, Ddc, LrtmP, Dusp23, Dnajbll, Hs3st6, Trib3, Eno3, CdhP, Fastk, Cox7a1, Adam11, Abhd14b, Dusp6i, Slc15a4, Ocell, Cygb, Rnf39, Fgfrl1, Brap, Stab2, Col6a1, Sparcll, Gm13021, Cnp, Fcna, Rbm33, Slc2a5, Slc5a6, Btbd9, Susd4, Ang33 - Отрицательная ДЭ [Negative DE] (-1,0) -(-0,5) Goltla, CsrnpP, Ccl6, Klf10, Maff Bpifc, Tmem33, Gls2, Camk2n1, Hspa5, Hikeshi, Phflld, Cript, Odc1, Tubalc, Chchd4, Slc39a4, Smim10lP, Ppp1r3b, Manf,Chordc1,Dcaf12l1,Zfp 672,Stip1,Ifi47, Cacybp, Steap4, Sdf2l1, Irgml, Timd2, Psme3, Them7, Rs5-8sP, Rdh16f2, Guk1, Klhl25, Hist1h2ab, Zfp133-ps, Samd9P, Fryl, Rtp4, Gsta4, Ces2b, Hbb-bl, Crot3, Tmem14a, Etfbkmt, Pinx1, Slc1a4, LgalsP. Arhgef15, Zbpl Сравнительная оценка влияния ресвератрола и карнитина 91 Окончание табл. 2 [Table 2 (end)] Интервал ДЭ [DE interval] (log2FC) Только у мышей DBA/2J [DBA mice only] Только у мышей DBCB [DBCB mice only] У мышей обоих генотипов2 [Both mice genotypes] Isg153,Tuft1, Scn8a, Mal2, Cysl, HausS3, Slc10a2, Gm9706, Pnma2, Ly6c1, Gstm2, Histlh2ba, Gpcl3, Trpml, Raetle3, Fam25c, Gck3, Aars2, Hsphl 1,0 g 0,5-1,0 Pomk, Clec4g Отрицательная ДЭ (-1,0)- (-0,5) Slc13a3, Prg43, Mvk3, Luc7l3, Eif3j2 Tff33, PopP, CrybbP3, Cdhl35, _Dnaibll5, Dnaicl, Krt222,_ Snap23, Cyp2c233-5, Oprml, Tacr2, Fgf23, Dclk3, TribP5, Zfp663, Sipall23, Nab2, Fbxo2l, Cib33, Psen235, Cyp2d37-ps, Cspg5, Vwce, Col6al5, FgfrlP, Tent5c, Gstp3, H2-Q5, Rbpl, Slcl7a5, Plekhg6, Slc2a55, Podn, Rasgeflb, Cygb5, Zbtb20, Scampl, Fll, Tbcld2b, Ccnel, Sytl, Isynal, Spsb4, Igsf8, Sptbn2, Pcp4lP, Susd45, Adcy9, _Slc5a65, Pura, Sultlc2, Tnxb_ Serpinhl, Ykt6, Tuba1c5, Creb5, Hacll, Dhrs4, Vnn3, Grhpr, Manf5, Cdadcl, Suox, Saraf Ccl6, Hmgn5, Slc10a25, Hikeshi5, Hspb8, Pdia4, Hspa55, Hist1h2bm, Serpina3h, Suv39h2, Irgm15, Skint7, Serpina3n, BmpP, Chordcl5, Cops9, Tmie, Sult2a73, Mms22l, Ifi27, Rtn4, Mx2, Pak4, Ppal, Atp6v0e2, Lbp, Spc25, Srekl, Hpgd, Nelfcd, Retsat3, OdcP, Zfp6725, Cyp3al6, Fam2l3b3, Cyp3all, Hbb-b25, Goltla, Cacybp5, Atxn7, Capzal, Pklr4, Hbb-b15, Hbb-bt, Hba-a1, Tkfc4 Н.В. Трусов, С.А. Апрятин, А.Н. Тимонин и др. Окончание табл. 3 [Table 3 (end)] Интервал ДЭ [DE interval] (log2FC) Только у мышей DBA/2J [DBA mice only] Только у мышей DBCB [DBCB mice only] У мышей обоих генотипов2 [Both mice genotypes] Hemgn, Fitm1, Ung, Mcam, Ephb3, Eyal, Steap45, ZbpP, Hist1h2ba5, GukP, Etfbkmt5, Ralgps1, Gsta23, Mtfr2, Ifi202b3-5, Serpinb8, Gck3-5, Ldlrad3, Isg153 5, Synj2, Sdf2l15, Tmem239, Vnn13 0,1) гена Maff (кофактор Nrf2-опосредуемой активации антиоксидант-чувствительных элементов генома) [39], S100a9, известного также как MRP14 - миелоид-родственный белок, играющий роль в реакциях врожденного иммунитета [40], и Klf9 - фактора дифференцировки адипоцитов, регулируемого PPARy [41]. Отрицательная ДЭ отмечена для гена Prg4 (протеогликан 4), возможно, отвечающего за накопление избытка жира, дислипидемию и инсулиновую резистентность [42], Didol (транскрипционный фактор, участвующий в процессах апоптоза) и Igfbpl (белок, связывающий инсулиноподобный фактор роста 1), участвует в развитии гипергликемии на высокоуглеводных рационах и является биомаркером метаболического синдрома [43]. Следует отметить, что в нашем предыдущем исследовании [44] Igfbpl ответил противоположной по направленности ДЭ в ответ на потребление флавоноида кверцетина у генетически тучных мышей db/db и мышей линии C57B1/6J, получавших ВУВЖР. Переходя к обсуждению эффектов влияния Рес и l-Кар на полнотранскрип-томный профиль ткани печени, следует в первую очередь остановиться на генах, ответивших противоположной по знаку статистически значимой ДЭ на ВУВЖР, с одной стороны, и на оба типа добавок - с другой. У мышей тетрагибридов DBCB показана ДЭ для генов Psen2, Lgals1 и Cdh1. Для Psen2 (presenilin 2), подавляемого на ВУВЖР и активируемого при потреблении обеих добавок, показано наличие выраженного противовоспалительного действия [45]. Данный белок представляет собой одну из субъединиц мембранной связанной протеазы (у-секретаза), отвечающей за элиминацию дефектных клеточных белков. В ЦНС он, по-видимому, играет важную роль в защите от развития болезни Альцгеймера; значение его экспрессии в периферических органах, включая печень, мало изучено. Такой же направленностью ДЭ характеризовался Cdh1. Он кодирует cadherin-1, известный также как LCAM, принадлежащий к семейству каль-ций-зависимых трансмембранных белков клеточной адгезии, играющих важную роль в пролиферации и дифференцировке к

Ключевые слова

транскриптом, экспрессия генов, биологически активные вещества, мыши, ожирение

Авторы

ФИООрганизацияДополнительноE-mail
Трусов Никита ВячеславовичФедеральный исследовательский центр питания, биотехнологии и безопасности пищин.с. лаборатории энзимологии питанияnikkitosu@yandex.ru
Апрятин Сергей АлексеевичИнститут экспериментальной медициныканд. биол. наук, с.н.с. лаборатории нейробиологии интегративных функций мозга Физиологического отдела им И.П. Павловаapryatin@mail.ru
Тимонин Андрей НиколаевичФедеральный исследовательский центр питания, биотехнологии и безопасности пищиканд. биол. наук, м.н.с. лаборатории иммунологииandrey8407@mail.ru
Шипелин Владимир АлександровичФедеральный исследовательский центр питания, биотехнологии и безопасности пищи; Российский экономический университет имени Г.В. Плехановаканд. мед. наук, с.н.с. лаборатории пищевой токсикологии и оценки безопасности нанотехнологийv.shipelin@yandex.ru
Гмошинский Иван ВсеволодовичФедеральный исследовательский центр питания, биотехнологии и безопасности пищид-р биол. наук, в.н.с. лаборатории пищевой токсикологии и оценки безопасности нанотехнологийgmosh@ion.ru
Никитюк Дмитрий БорисовичФедеральный исследовательский центр питания, биотехнологии и безопасности пищи; Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченовад-р мед. наук, профессор, член-корр. РАН, директорnikitjuk@ion.ru
Всего: 6

Ссылки

Тутельян В.А., Киселёва Т.Л., Кочеткова А.А., Смирнова Е.А., Киселёва М.А., Саркисян В.А. Перспективные источники фитонутриентов для специализированных пищевых продуктов с модифицированным углеводным профилем: опыт традиционной медицины // Вопросы питания. 2016. Т 84, № 4. С. 46-60.
Тутельян В.А., Кочеткова А.А., Саркисян В.А. Специализированные пищевые продукты в современной парадигме алиментарной коррекции нарушений метаболома // FOODLIFE 2018. Генетические ресурсы растений и здоровое питание: потенциал зерновых культур : материалы конференции. 2018. С. 22.
Bojanowska E., Ciosek J. Can we selectively reduce appetite for energy-dense foods? An overview of pharmacological strategies for modification of food preference behavior // Current Neuropharmacology. 2016. Vol. 14, № 22. PP. 118-142. https://doi.org/10.2174/15 70159x14666151109103147
Rauf A., Imran M., Suleria H.A.R., Ahmad B., Peters D.G., Mubarak M.S. A comprehensive review of the health perspectives of resveratrol // Food and Function. 2017. Vol. 8, № 12. PP. 4284-4305. https://doi.org/10.1039/c7fo01300k
Repossi G., Das U., Eynard A.R. Molecular basis of the beneficial actions of resveratrol // Archives of Medical Research. 2020. Vol. 51, № 2. PP. 105-114. https://doi.org/10.1016/). arcmed.2020.01.010
Alam Md.A., Kauter K., Withers K., Sernia C., Brown L. Chronic l-arginine treatment improves metabolic, cardiovascular and liver complications in diet-induced obesity in rats // Food and Function. 2013. Vol. 4, № 1. PP. 83-91. https://doi.org/10.1039/c2fo30096f
Раджабкадиев Р.М., Коростелева М.М., Евстратова В.С., Никитюк Д.Б., Ханферьян Р.А. L-карнитин: свойства и перспективы применения в спортивной практике // Вопросы питания. 2015. Т 84, № 3. С. 4-12.
Brass E.P. Carnitine and sports medicine: use or abuse? // Annals of the New York Academy of Sciences. 2004. Vol. 1033, № 1. PP. 67-78. https://doi.org/10.1196/annals.1320.006
Поварова О.В., Городецкая Е.А., Каленикова Е.И., Медведев О.С. Метаболические маркеры и окислительный стресс в патогенезе ожирения у детей // Российский вестник перинатологии и педиатрии. 2020. Т 65, № 1. С. 22-29.
Christenson J., Whitby S.J., Mellor D., Thomas J., McKune A., Roach P.D., Naumovski N. The effects of resveratrol supplementation in overweight and obese humans: a systematic review of randomized trials // Metabolic syndrome and related disorders. 2016. Vol. 14, № 7. PP. 323-33. https://doi.org/10.1089/met.2016.0035
Pooyandjoo M., Nouhi M., Shab-Bidar S., Djafarian K., Olyaeemanesh A. The effect of L-carnitine on weight loss in adults: a systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials // Obesity Reviews. 2016. Vol. 17, № 10. PP. 970-976. https://doi.org/10.1111/obr.12436
Nadler S.T., Stoehr J.P., Schueler K.L., Tanimoto G., Yandell B.S., Attie A.D. The expression of adipogenic genes is decreased in obesity and diabetes mellitus // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2000. Vol. 97, № 21. PP. 11371-11376. https://doi.org/10.1073/pnas.97.21.11371
Apryatin S.A., Shipelin V A., Trusov N.V., Mzhelskaya K.V., Evstratova V. S., Kirbaeva N.V., Soto J.S., Fesenko Z.S., Gainetdinov R.R., Gmoshinski I.V Comparative analysis of the influence of a high-fat/high-carbohydrate diet on the level of anxiety and neuromotor and cognitive functions in Wistar and DAT-KO rats // Physiological Reports. 2019. Vol. 7, № 4. e13987. https://doi.org/10.14814/phy2.13987
Apryatin S.A., Trusov N.V., Gorbachev A.Yu., Naumov V.A., Balakina A.S., Mzhel’skaya K.V., Gmoshinski I.V. Comparative whole transcriptome profiling of liver tissue from Wistar rats fed with diets containing different amounts of fat, fructose, and cholesterol // Biochemistry (Moscow). 2019. Vol. 84. PP. 1093-1106. https://doi.org/10.1134/S0006297919090128
Apryatin S.A., Trusov N.V., Gorbachev A.J., Naumov V.A., Mzhel’skaya K.V., Balakina A.S., Gmoshinski I.V. Full transcriptome profiling of the liver of fat-, fructose and cholesterol-fed C57Black/6J Mice // Russian Journal of Genetics. 2019. Vol. 55, № 4. PP. 399-410. https://doi.org/10.1134/S1022795419040021
Benjamini Y., Hochberg Y. Controlling the false discovery rate: a practical and powerful approach to multiple testing // Journal of the Royal Statistical Society. Series B (Methodological).1995.Vol.57, № 1.PP.289-300.https://doi.org/10.1111/j.2517-6161.1995. tb02031.x
Трусов Н.В., Мжельская К.В., Шипелин В.А., Шумакова А.А., Тимонин А.Н., Ригер Н.А., Апрятин С.А., Гмошинский И.В., Никитюк Д.Б. Влияние l-карнитина на иммунологические, интегральные и биохимические показатели мышей, получающих рацион с избытком жира и фруктозы // Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. 2019. Т 105, № 5. С. 619-633. https://doi.org/10.1134/S0869813919050121
Апрятин С.А., Мжельская К.В., Трусов Н.В., Балакина А.С., Сото Х.С., Бекетова Н.А., Кошелева О.В., Гмошинский И.В., Никитюк Д.Б. Биохимические и морфологические показатели инбредных/аутбредных линий и тетрагибрида DBCB мышей в высокосахарозной in vivo модели метаболического синдрома // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2018. Т 166, № 7. С. 107-113.
Информация фирмы Agilent. URL: https://www.agilent.com/en/product/gene-expression-microarray-platform/gene-expression-exon-microarrays/model-organism-microarrays/sureprint-g3-mouse-gene-expression-microarrays-228472#zoomELIBRARY_669002, (дата обращения: 05.09.2020).
Gao M., Ma Y, Liu D. High-fat diet-induced adiposity, adipose inflammation, hepatic steatosis and hyperinsulinemia in outbred CD-1 mice // PLoS ONE. 2015. Vol. 10, № 3. e0119784. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0119784
Sato M., Kawakami T., Kondoh M., Takiguchi M., Kadota Y., Himeno S., Suzuki S. Development of high-fat-diet-induced obesity in female metallothionein-null mice // FASEB Journal. 2010. Vol. 24, № 7. PP. 2375-2384. https://doi.org/10.1096/fj.09-145466
Dos Santos Rocha P.B., de Castro Amorim A., de Sousa A.F., do Monte S.J., da Mata Sousa L.C., do Nascimento Nogueira N., Neto J.M., do Nascimento Marreiro D. Expression of the zinc transporters genes and metallothionein in obese women // Biological Trace Element Research. 2011. Vol. 143, № 2. PP. 603-611. https://doi.org/10.1007/s12011-010-8887-7
Ma S., Rubin B.P. Apoptosis-associated tyrosine kinase 1 inhibits growth and migration and promotes apoptosis in melanoma // Laboratory Investigation. 2014. Vol. 94, № 4. PP. 430-438. https://doi.org/10.1038/labinvest.2014.13
Xin Y, Li C., Guo Y., Xiao R., Zhang H., Zhou G. RNA-Seq analysis reveals a negative role of MSMO1 with a synergized NSDHL expression during adipogenesis of 3T3-L1 // Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry. 2019. Vol. 83, № 4. PP. 641-652. https://doi.org/10.1080/09168451.2018.1559719
Burhans M.S., Flowers M.T., Harrington K.R., Bond L.M., Guo C.A., Anderson R.M., Ntambi J.M. Hepatic oleate regulates adipose tissue lipogenesis and fatty acid oxidation // Journal of Lipid Research. 2015. Vol. 56, № 2. PP. 304-318. https://doi.org/10.1194/jlr. M054429
Hall J.M., Powell H.R., Rajic L., Korach K.S. The role of dietary phytoestrogens and the nuclear receptor PPARy in adipogenesis: an in vitro study // Environmental Health Perspectives. 2019. Vol. 127, № 3. е37007. https://doi.org/10.1289/EHP3444
Welch R.D., Billon C., Kameric A., Burris T.P., Flaveny C.A. Rev-erba heterozygosity produces a dose-dependent phenotypic advantage in mice // PLoS One. 2020. Vol. 15, № 5. e0227720. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0227720
Napolitano A., van der Veen A.G., Bunyan M., Borg A., Frith D., Howell S., Kjaer S., Beling A., Snijders A.P., Knobeloch K.P., Frickel E.M. Cysteine-reactive free ISG15 generates IL-1P-producing CD8a + dendritic cells at the site of infection // Journal of Immunology. 2018. Vol. 201, № 2. PP. 604-614. https://doi.org/10.4049/jimmunol.1701322
Xu Y, Knipp G.T., Cook T.J. Expression of CYP4A isoforms in developing rat placental tissue and rat trophoblastic cell models // Placenta. 2005. Vol. 26б, № 2-3. PP. 218-225. https://doi.org/10.1016/j.placenta.2004.05.006
Kocarek T.A., Duanmu Z., Fang H.L., Runge-Morris M. Age- and sex-dependent expression of multiple murine hepatic hydroxysteroid sulfotransferase (SULT2A) genes // Biochemical Pharmacology. 2008. Vol. 76, № 8. PP. 1036-1046. https://doi.org/10.1016/j. bcp.2008.07.032
van Tienen F.H.J, Laeremans H., van der Kallen C.J.H., Smeets H.J.M. Wnt5b stimulates adipogenesis by activating PPARgamma, and inhibiting the beta-catenin dependent Wnt signaling pathway together with Wnt5a // Biochemical and Biophysical Research Communications. 2009. Vol. 387, № 1. PP. 207-211. https://doi.org/10.1016/j. bbrc.2009.07.004
Fidaleo M., Amauld S., Clemencet M.C., Chevillard G., Royer M.C., De Bruycker M., Wanders R.J.A., Athias A., Gresti J., Clouet P, Degrace P., Kersten S., Espeel M., Latruffe N., Nicolas-Frances V, Mandard S. A role for the peroxisomal 3-ketoacyl-CoA thiolase B enzyme in the control of PPARa-mediated upregulation of SREBP-2 target genes in the liver // Biochimie. 2011. Vol. 93, № 5. PP. 876-891. https://doi.org/10.1016/). biochi.2011.02.001
Tsuchida T., Fukuda S., Aoyama H., Taniuchi N., Ishihara T., Ohashi N., Sato H., Wakimoto K., Shiotani M., Oku A. MGAT2 deficiency ameliorates high-fat diet-induced obesity and insulin resistance by inhibiting intestinal fat absorption in mice // Lipids in Health and Disease. 2012. Vol. 11. е75. https://doi.org/10.n86/1476-5nX-11-75
Ham M., Sik S.C., Shin K.C., Choi G., Kim J.W., Noh J.R., Kim Y.H., Ryu J.W., Yoon K.H., Lee C.H., Kim J.B. Glucose-6-phosphate dehydrogenase deficiency improves insulin resistance with reduced adipose tissue inflammation in obesity // Diabetes. 2016. Vol. 65, № 9. PP 2624-2638. https://doi.org/10.2337/db16-0060
Keiran N., Ceperuelo-Mallafre V, Calvo E., Hernandez-Alvarez M.I., Ejarque M., Nunez-Roa C., Horrillo D., Maymo-Masip E., Rodriguez M.M., Fradera R., de la Rosa J.V., Jorba R., Megia A., Zorzano A., Medina-Gomez G., Serena C., Castrillo A., Vendrell J., Fernandez-Veledo S. SUCNR1 controls an anti-inflammatory program in macrophages to regulate the metabolic response to obesity // Nature Immunology. 2019. Vol. 20, № 5. PP. 581-592. https://doi.org/10.1038/s41590-019-0372-7
Hughes M.F., Edwards B.C., Herbin-Davis K.M., Saunders J., Styblo M., Thomas D.J. Arsenic (+3 oxidation state) methyltransferase genotype affects steady-state distribution and clearance of arsenic in arsenate-treated mice // Toxicology and Applied Pharmacology. 2010. Vol. 249, № 3. PP. 217-223. https://doi.org/10.1016/j.taap.2010.09.017
Imaoka S., Wedlund P.J., Ogawa H., Kimura S., Gonzalez F.J., Kim H.Y. Identification of CYP2C23 expressed in rat kidney as an arachidonic acid epoxygenase // The Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics. 1993. Vol. 267, № 2. PP. 1012-1016.
Peng Y, Rideout D., Rakita S., Lee J., Murr M. Diet-induced obesity associated with steatosis, oxidative stress, and inflammation in liver // Surgery for Obesity and Related Diseases. 2012. Vol. 8, № 1. PP. 73-81. https://doi.org/10.1016/j.soard.2011.07.019
Katsuoka F., Motohashi H., Ishii T., Aburatani H., Engel J.D., Masayuki Y Genetic evidence that small maf proteins are essential for the activation of antioxidant response element-dependent genes // Molecular and Cellular Biology. 2005. Vol. 25, № 18. PP. 8044-8051. https://doi.org/10.1128/MCB.25.18.8044-8051.2005
Xia C., Razavi M., Rao X., Braunstein Z., Mao H., Toomey A.C., Wang Y, Simon D.I., Zhao S., Rajagopalan S., Zhong J. MRP14 enhances the ability of macrophage to recruit T cells and promotes obesity-induced insulin resistance // International Journal of Obesity. 2019. Vol. 43, № 12. PP. 2434-2447. https://doi.org/10.1038/s41366-019-0366-4
Pei H., Yao Y., Yang Y, Liao K., Wu J.R. Kruppel-like factor KLF9 regulates PPARy transactivation at the middle stage of adipogenesis // Cell Death and Differentiation. 2011. Vol. 18, № 2. PP. 315-327. https://doi.org/10.1038/cdd.2010.100
Nahon J.E., Hoekstra M., van Harmelen V, Rensen P.C.N., van Dijk W.K., Kooijman S., Van Eck M. Proteoglycan 4 deficiency protects against glucose intolerance and fatty liver disease in diet-induced obese mice // Biochimica et Biophysica Acta. Molecular Basis of Disease. 2019. Vol. 1865, № 2. PP. 494-501. https://doi.org/10.1016/j.bbadis.2018.11.009
Degenhardt T., Matilainen M., Herzig K.H., Dunlop T.W., Carlberg C. The insulin-like growth factor-binding protein 1 gene is a primary target of peroxisome proliferator-activated receptors // The Journal of Biological Chemistry. 2006. Vol. 281, № 51. PP. 39607-39619. https://doi.org/10.1074/jbc.M605623200
Трусов Н.В., Апрятин С.А., Шипелин В.А., Гмошинский И.В. Полнотранскриптомный анализ генов печени мышей в сравнительном исследовании эффективности кверцетина на двух моделях ожирения // Проблемы эндокринологии. 2020. Т 66, № 5. С. 31-47. https://doi.org/10.14341/probl12561
Jiang X., Zhang D., Shi J., Chen Y, Zhang P, Mei B. Increased inflammatory response both in brain and in periphery in presenilin 1 and presenilin 2 conditional double knock-out mice // Journal of Alzheimers Disease. 2009. Vol. 18, № 3. PP. 515-523. https://doi.org/10.3233/JAD-2009-1164
Schneider M.R., Kolligs F.T. E-cadherin’s role in development, tissue homeostasis and disease: insights from mouse models: tissue-specific inactivation of the adhesion protein E-cadherin in mice reveals its functions in health and disease // Bioessays. 2015. Vol. 37, № 3. PP 294-304. https://doi.org/10.1002/bies.201400141
Potikha T., Ella E., Cerliani J.P., Mizrahi L., Pappo O., Rabinovich G.A., Galun E., Goldenberg D.S. Galectin-1 is essential for efficient liver regeneration following hepatectomy // Oncotarget. 2016. Vol. 7, № 22. PP. 31738-31754. https://doi.org/10.18632/oncotarget.9194
Jiang Z.J., Shen Q.H., Chen H.Y, Yang Z., Shuai M.Q., Zheng S.S. Galectin-1 gene silencing inhibits the activation and proliferation but induces the apoptosis of hepatic stellate cells from mice with liver fibrosis // International Journal of Molecular Medicine. 2019. Vol. 43, № 1. PP 103-116. https://doi.org/10.3892/ijmm.2018.3950
Kim G.Y, Lee Y.M., Cho J.H., Pan C.J., Jun H.S., Springer D.A., Mansfield B.C., Chou J.Y Mice expressing reduced levels of hepatic glucose-6-phosphatase-a activity do not develop age-related insulin resistance or obesity // Human Molecular Genetocs. 2015. Vol.24, № 18. PP. 5115-5125. https://doi.org/10.1093/hmg/ddv230
Plutzky J., Kelly D.P The PPAR-RXR transcriptional complex in the vasculature: energy in the balance // Circulation Research. 2011. Vol. 108, № 8. PP. 1002-1016. https://doi.org/10.1161/CIRCRESAHA.110.226860
Трусов Н.В., Апрятин С.А., Горбачев А.Ю., Наумов В.А., Мжельская К.В., Гмошинский И.В. Влияние гиперкалорийного рациона и кверцетина на полнотранскриптомный профиль ткани печени крыс линии Zucker-LEPRfa // Проблемы эндокринологии. 2018. Т. 64, № 6. С. 371-382. https://doi.org/10.14341/probl9936
Das U.N. Bioactive lipids in age-related disorders. In: Guest P. (eds) Reviews on new drug targets in age-related disorders // Advances in Experimental Medicine and Biology. Vol. 1260. Springer, Cham. 2020. PP. 33-83. https://doi.org/10.1007/978-3-030-42667-5_3
 Сравнительная оценка влияния ресвератрола и карнитина на полнотранскриптомный профиль ткани печени мышей с различной предрасположенностью к развитию алиментарного ожирения | Вестник Томского государственного университета. Биология. 2021. №  54. DOI: 10.17223/19988591/54/5

Сравнительная оценка влияния ресвератрола и карнитина на полнотранскриптомный профиль ткани печени мышей с различной предрасположенностью к развитию алиментарного ожирения | Вестник Томского государственного университета. Биология. 2021. № 54. DOI: 10.17223/19988591/54/5